Principy vyšetření hemostázy, preanalýza FN BRNO Dělení testů dle principu *Koagulační Fotometrické ^Imunochemické -_s Turbidimetrické (jiné než koagulační, imunochemické) Sledování času rozpuštění koagula * Sledování rozpustnosti koagula Jiné Dělení testů dle principu Koagulační _i sledování času srážení manuálně (kývání, rotace) aktivovaná doba srážení ^ sledování času vytvoření fibrinového vlákna manuálně (háčkování) koagulometr (poloautomat, automať mechanické • kuličkové (sledování změn pohybu kuličky) • háčkové optické • nefelometrie (sledování rozptylu světla) • turbidimetrie (sledování průchodnosti světla) Dělení testů dle principu * Fotometrické ^ sledování změn zbarvení v důsledku štěpení specifického chromogenního substrátu - detekce absorbance (A) • end point" (A) • kinetické (AA/min) i] limitace -hemolytické a ikterické vzorky Turbidimetrické (jiné než koagulační, imunochemické) ilj sledování změn zakalení • detekce změn transmise (propustnosti T) • detekce změn absorbance ^ limitace-chylózní vzorky Kinetické měření Dělení testů dle principu Imunochemické ^ sledování reakce antigénu s protilátkou aglutinace • LIA • ELISA jEID Aglutinační metody sledování aglutinace viditelných částic s navázanou protilátkou proti vyšetřovanému antigénu * odečítání makroskopicky ^ pozitivní( +, ++, +++)/negativní ^ semikvantitativní metody (udaná mez detekce) metody ^ latexaglutinační (např. FDP, D-Di) ^ hemaglutinační (např. FM) Příklad vyšetření D-Dimerů Mez detekce = 0,5 mg/l neředěný vzorek vzorek ředěný 1:6 výsledek aglutinace < 0,5 mg/l aglutinace + > 0,5 mg/l a < 3,0 mg/l aglutinace + + > 3,0 mg/l Liquid immunoassay - LIA metody Sledování aglutinace mikrolatexových částic s navázanou protilátkou proti vyšetřovanému antigénu Odečítání optickým systémem koagulometru *j Změna zakalení (AA/min) * Kvantitativní metody (např. D-Di, vWF:Ag...) * Limitace ^ Chylozita vzorku ^1 Hookův jev (vysycení protilátky antigenem) LIA testy Provedení (STA© Liatest© D-Dimer) 50 uJ vzorku 100 \l\ pufru inkubace 240 s 150 ml latexového měříme činidla změnu ^ absorbance mezi 12S-140S LIA testy Kalibrace ^ Sigmoidní ^ Křivka 3. řádu ^ Minimálně 5 bodu ^ Platí pro celou šarži ELISA metody Stanovení antigenu(Ag)pomocí protilátky (Ab) značené enzymem (AbE) - kvantitativní inkubace vzorku v mikrotitračních jamkách s navázanou Ab proti vyš. Ag - vazba Ag na Ab *j odsátí vzorku + promytí ^ inkubace AbE v jamkách - vazba na Ag ^ odsátí AbE a promytí ^ detekce enzymatické aktivity komplexu Ab-Ag ■ AbE po přídavku chromogenního substrátu (A) j přímá úměra: enzym, aktivita x množství Ag Elektroimunodifúze - EID metody * vyšetřovaný antigén reaguje s protilátkou přítomnou v agarózovém gelu při elektroforéze za vzniku precipitačního píku Adélka píku je přímo úměrná koncentraci antigénu kvantitativní metoda Princip EID kalibrace vzorky pacientů Vyšetření plazmatických proteinů Vyšetření funkční aktivity ^ koagulační metody ^ fotometrické metody Vyšetření antigénu ^ imunochemické metody j umožňují odlišení defektů :valitativních ) kvantitativních Dělení testů Testy globální ^ postihují celý systém (i více) Testy skupinové (screenini ^ postihují určitou část koagulačního systému ^ umožňují odlišení poruch vnitřní a vnější cesty a přeměny fibrinogenu Testy speciální ^ vyšetřují jednotlivé složky systémů Správnost laboratorních výsledků Faktory ^ objektivní ^ subjektivní Faktory ^ preanalytické ^ analytické ^ postanalytické Preanalytické faktory Příprava pacienta ^ Odběr vzorku * Transport vzorku * Zpracování vzorku * Skladování vzorku Příprava pacienta ^Odběr na lačno nebo po lehké snídani bez tuků Dostatečný příjem tekutin Uvedení času odběru * Uvedení léčby * Uvedení komolikace oři odběru Odběr vzorku * Minimální zatažení paže *Do plastikových nebo silikonovaných skleněných zkumavek ^ První 2-3 ml nelze použít ■^Antikoagulační roztok pro nesrážlivou krev-citrát sodný v ředění 1:10 * Šetrné promíchání krve s citrátem (5-1 Ox) Nedostatečné promíchání krve s citrátem Nebezpečí aktivace a srážení vzorku * Koncentrování citrátu u hladiny ^ automaty pipetují těsně pod hladinou naředěnou plazmu s nadbytkem citrátu ^ špatné výsledky ^ ověření po stažení plazmy a promíchání Antikoagulancia Citrát sodný 5j 0,109 mol/l (3,2 %) doporučeno 5j 1,129 mol/l (3,8%) *CTAD zkumavky ^ brání aktivaci trombocytů Správný odběr vzorku Vyřadit vzorky * Sražené S chybným objemem krve (rozdíl 10%) Hemolytické, ikterické a chylózní ^ hemolytický a ikterický vzorek • ovlivňuje výrazně fotometrická stanovení chylózní vzorek j ovlivňuje výrazně koagulační stanovení na optických koagulometrech a imunochemická stanovení vyhodnocovaná opticky Správný odběr vzorku Hematokrit 30 % nebo >60 % upravit objem citrátu 100 - hematokrit ml citrátu = ------------------x ml plné krve 595 - hematokrit Transport vzorku *Čas * Teplota Mechanické vlivy (potrubní pošta) Zpracování vzorku * Odstranění krevních buněk centrifugací Stažení plazmy Většina testů do 1 -2 hod po odběru * Výjimka EGT, EF (15-30 min), heparin, PAI-1, LA, vyšetření fcí trombocytů Vyšetřovaný materiál Plazma *y plazma bohatá na trombocyty j centrifugace 10 minut 150 - 250 g, sedimentace *y plazma chudá na trombocyty j centrifugace 15 minut 2500 g ^ bezdestičková plazma dvojnásobná centrifugace + filtrace Plná kn Sérum Centrifugace -v Výpočet otáček pro danou centrifugu g = 1,118x10"5xrxN2 r = poloměr otáčení v cm, N = otáčky/min Příklad: r = 15 cm, 2500g 3860 otáček/min Skladování vzorků Laboratorní teplota 18-25 °C a PT 8 hodin ^ APTT 4 hodiny ^ APTT (léčba heparinem) 2 hodiny ^ jednotlivé faktory : 2 - 8 hod Vyšší teplota ne Uložení v lednici (aktivace FF VII a XII) Zamrazování vzorků Plazma chudá na destičky/bezdestičková Objem > 500 mI Zkumavka se zátkou * Správná velikost zkumavky * Zkumavka naplněná do 3/4 Rychlé zamrazení (-70 °c, -196 °C) ■^Sskladování zamrazených vzorků ^ krátkodobé -20 °C, dlouhodobé: - 70 "C Rozmrazování vzorků *Při 37 °C 15 minut ^ Dobře promíchat * Opakované zamrazení není možné Analytické faktory Dodržování metodických postupů * Správné pracovní návyky Správná funkce a kalibrace přístrojů Výběr diagnostických setů a reagencií Správná volba kalibračních a kontrolních materiálů Správně provedená kalibrace a kontroly kvality Postanalytické faktory Rozmezí fyziologických hodnot Terapeutické rozmezí * Vyjadřování výsledků * Vyhodnocení výsledků Interpretace výsledků