Moderní metody analýzy genomu NGS aplikace Veronika Navrkalová Středoevropský technologický institut (MU) a Interní hematologická a onkologická klinika (FN Brno) Obsah • Obecné využití NGS • Aplikace v různých biologických oborech • Využití v biomedicíně a onkologii • Hematoonkologie • Aplikace při studiu CLL a využití na našem pracovišti Stratton 2009 Vývoj sekvenování • SNV = single nucleotide variants (mutace/SNP) • CNV = copy number variation (inzerce/delece) • strukturní aberace (translokace/inverze) • genová exprese (mRNA) • epigenetika (metylované oblasti) • interakce DNA-protein Obecné využití NGS Simon 2013 Přístupy NGS Genom Exom Amplikon Transkriptom Celogenomové sekv. = WGS Sekvenace celé chromozomální DNA  úplná informace o genomu (pokryty i promotorové a regulační sekvence) 1. De novo asembly - využívá překryvů sekvencí, předpokladem dostatečné pokrytí (>10x) 2. Resekvenování - mapování na referenční sekvenci Exomové sekv. • WES = whole exome sequencing • Sekvenování jen kódujících oblastí = exom (asi 1 % genomu) • Efektivnějsí: rychlost, cena, vyšší pokrytí Cílené sekv. • Targeted sequencing • Identifikace vzácnějších variant pod detekčním limitem Sangera (až 1% při vysokém pokrytí) • Výhody: rychlost, cena, méně prostoru pro skladování dat • Pro sekvenování velkého počtu vzorků (screening) nebo validaci genetických variant v populaci Tři způsoby přípravy knihovny 1. multiplex PCR: AmpliSeq (Life Tech.) až 6144 párů primerů 2. single-plex PCR: Microdroplet PCR (RainDance Tech.), Access Array System (Fluidigm) 3. targeted capture (cílený „záchyt“ sondami) s následnou multiplex PCR: TrueSeq Amplicon (Illumina), HaloPlex (Agilent Tech.), SeqCap EZ technology (Roche NimbleGen) Klinické využití • Nejvhodnější „targeted capture“ • Komerční kity: • diagnostické kity (panely genů různých onemocnění) • nádorové panely (záchyt hereditárních nádorových onemocnění) • panely genů dle přání zákazníka Transkriptom = soubor všech molekul RNA (mRNA, rRNA, tRNA a noncoding RNA) Sekv. transkriptomu = RNA seq Wang 2009 • Detekce somatických mutací, mezigenových fúzí a alternativních sestřihových variant • Studium ncRNA: regulace proliferace, diferenciace a apoptózy, regulace genové exprese (miRNA) • Na rozdíl od čipových technologií není limitována předchozí znalostí genomu, dynamickým rozlišením nebo zkříženou (cross) hybridizací NGS a epigenetika Metylace DNA: 80% C, umlčení transkripce genů Bisulfitová konverze + NGS: • konverze C  U, Met-C se nemění • přesná identifikace jednotlivých metylovaných bazí ChIP- Seq • Sledování interakcí mezi proteiny, DNA a RNA  vazebná místa pro TF, histony, a další proteiny • Regulace genové exprese, epigenetické modifikace chromatinu Mundade 2014 Studium druhové diverzity (genotypizace): • fylogeneze živočišných druhů (Ellegren 2012) • identifikace nových virových variant (Kapgate 2015) • šlechtění plodin v zemědělství (Fridman 2012) Mezioborové využití NGS Metagenomika: studium mikrobiálního složení v různých typech prostředí (střevní mikroflóra, zubní plak, půda, korálové útesy, mořské dno) • bez potřeby kultivace • identifikace patogenů, virulence, rezistence, atd. Padmanabhan 2013 Forenzní genetika: Yang 2014 Využití v medicíně • molekulární diagnostika dědičných chorob a infekčních onemocněních • prenatální diagnostika (neinvazivní, z fetální DNA v mateřské plazmě) • farmakogenomika (identifikace nových terapeutických cílů, studium rezistence) • onkologie! Onkologie • molekulární diagnostika nádorů • analýza prognostických markerů • objasnění mechanizmů kancerogeneze (mutační profily nádorů) • hledání nových rekurentně mutovaných genů (nezachytitelných standardními metodami) Přínos NGS v onkologii • RNA seq: objev nových fúzí genů  mohou být využity jako dg markery a potenciální terapeutické cíle (tkáňově specifické nebo univerzální) • translokace EML4- ALK u nemalobuněčného karcinomu plic • translokace TMPRSS2- ERG u karcinomu prostaty (Dong 2012) • Identifikace germinálních mutací (WES): • familiární nádory pankreatu (PALB2) • dědičný feochromocytom (MAX) • familiární melanom (MITF) • Cílené sekvenování: • detekce 21 nových mutací BRCA asociovaných s hereditárními nádory mléčné žlázy a vaječníku (neodhalitelné Sangerem a MLPA) (Walsh 2010) NGS  personalizovaná léčba Koubkova 2014; Guan 2012 International Cancer Genome Consortium (ICGC): Cancer GenomeProjekt – charakterizace genomických, transkriptomických a epigenomických změn u 50 nejdůležitějších nádorů Využití NGS v onkologické praxi National Cancer Institute (NCI): projekt vytvoření atlasu nádorových genů – The Cancer Genom Atlas (TCGA) za účelem zlepšit nádorovou prevenci, včasnou detekci a léčbu Hematoonkologie První celogenomový sekvenační projekt 2008: porovnání nádorového a normálního vzorku téhož pacienta s AML  identifikace osmi nových somatických mutací (Ley 2008) Studium klonální evoluce AML pomocí WGS: identifikace somatických mutací objevujících se při relapsu (pravděpodobně díky cytotoxické terapii) Ding 2012 DLBCL Identifikace nových genů zahrnutých v patogenezi  předefinování typů DLBCL a … …. nalezení nových potenciálních terapeutických cílů Jardin 2014 CLL Objev nových rekurentně mutovaných genů (WGS, WES) – SF3B1, NOTCH1, BIRC3, MYD88  (Wang 2011, Puente 2012, Quesada 2012) Wang 2011  defekty zahrnuty v několika signalizačních drahách Wang 2011 Klonální architektura CLL – časné klonální (del13q, tri12, MYD88) a pozdější subklonální aberace (TP53, SF3B1)  selekce léčbou a rychlejší progrese Landau 2013 Landau 2013 Model vývoje CLL Klinický dopad TP53 subklonů – ultra-deep sequencing (median alel. frekvence 2%)  špatné přežití, evoluce klonu při relapsu a účast na vzniku chemorezistence Rossi 2014 Naše zkušenosti (IHOK FN Brno a CEITEC) Přechod od čipových technologií k NGS – flexibilita, citlivost, rychlost, cena, přesnost • Ultra-deep sekv. (MiSeq) – klonální evoluce mutací v TP53 u CLL (Malcikova 2014) • Detekce ATM mutací u CLL a MCL (Miseq) • Exomové sekv. (NextSeq) – germinální mutace u hematologických malignit • Celogenomové sekv. (EMBL, Heidelberg) Nevýhody NGS Limity zavedení do klinické praxe: • cena celogenomového sekvenování (cíl 1 000 $ /běh/pokrytí 30x, Illumina) • obrovské množství generovaných dat (otázka uchovávání  vysoké náklady) • absence standardu pro určení kvality sekv. dat, rozdílné bioinformatické strategie • etická otázka nakládání s NGS daty Literatura • Stratton 2009: The cancer genome. • Simon 2013: Implementing personalized cancer genomics in clinical trials. • Wang 2009: RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics • Meaburn 2012: Next generation sequencing in epigenetics: insights and challenges. • Mundade 2014: Role of ChIP-seq in the discovery of transcription factor binding sites, differential gene regulation mechanism, epigenetic marks and beyond. • Padmanabhan 2013: Genomics and metagenomics in medical microbiology. • Ellengren 2012: The genomic landscape of species divergence in Ficedula flycatchers. • Kapgate 2015: Next generation sequencing technologies: Tool to study avian virus diversity. • Fridman 2012: Next-generation education in crop genetics. • Yang 2014: Application of next-generation sequencing technology in forensic science. • Dong 2012: Exploring the cancer genome in the era of next-generation sequencing. • Walsh 2010: Detection of inherited mutations for breast and ovarian cancer using genomic capture and massively parallel sequencing. • Koubkova 2014: Sekvenování nové generace a možnosti jeho využití v onkologické praxi • Guan 2012: Application of nextgeneration sequencing in clinical oncology to advance personalized treatme nt of cancer. • Ley 2008: DNA sequencing of a cytogenetically normal acute myeloid leukaemia genome. • Ding 2012: Clonal evolution in relapsed acute myeloid leukaemia revealed by whole-genome sequencing. • Jardin 2014: Next generation sequencing and the management of diffuse large B-cell lymphoma: from whole exome analysis to targeted therapy. • Wang 2011: SF3B1 and Other Novel Cancer Genes in Chronic Lymphocytic Leukemia • Landau 2013: Evolution and Impact of Subclonal Mutations in Chronic Lymphocytic Leukemia • Rossi 2014: Clinical impact of small TP53 mutated subclones in chronic lymphocytic leukemia. Děkuji za pozornost