CH50 Funkční vyšetření komplementového systému (klasická cesta aktivace) Teorie: Komplement řadíme mezi humorální složky vrozené imunity. Je tvořen souborem asi 30 sérových a membránových termolabilních proteinů, které za normálních okolností kolují v těle ve formě inaktivních proenzymů. Komplementový systém je aktivován třemi způsoby: alternativní, klasickou či lektinovou cestou. Po aktivaci komplementu se spouští kaskáda po sobě následujících kroků, které vedou k amplifikaci imunitní odpovědi a tvorbě lytického komplexu MAC (membrane attack komplex). Hlavními funkcemi komplementových složek jsou: lýza buněk, opsonizace a chemotaxe. CH50 je funkčním testem komplementového systému spouštěného klasickou cestou. K tomuto účelu se využívají beraní erytrocyty a amboceptor (králičí protilátka proti beraním erytrocytům), ke kterým se přidá vzorek vyšetřovaného séra. Pokud je komplementový systém v séru funkční, dojde v přítomnosti amboceptoru k lýze beraních erytrocytů. Uvolněný hemoglobin způsobí zvýšení absorbance roztoku, která se změří spektrofotometricky. K vyjádření výsledku se používá tzv. jednotka CH-50, která udává množství komplementu v 1 ml séra, které způsobí za standardních podmínek 50% lýzu definované suspenze beraních erytrocytů. V prostředí destilované vody dojde ke 100% hemolýze. Materiál a pomůcky: 5% suspenze beraních erytrocytů, pracovní roztok amboceptoru (králičí protilátka třídy IgM proti beraním erytrocytům), fyziologický roztok, destilovaná voda, kádinky, mikrozkumavky (eppendorfky), vortex, centrifuga, reader absorbance, pipety, špičky, stepper + nástavec, mikrotitrační destičky. Postup: 1. Příprava sér: Sérum, které bylo do hodiny od odběru zamraženo (složky komplementu jsou termolabilní!) je nutno rozmrazit na pokojovou teplotu a před pipetováním důkladně promíchat na vortexu. Pro každé sérum připravíme do mikrozkumavky 2 ředění: ředění I (40x) ... 25 ml séra + 975 ml fyz.roz. ředění II (60x) ... 15 ml séra + 885 ml fyz.roz. Promíchejte na vortexu. 2. Příprava hemolytického systému: do 5% suspenze beraních erytrocytů se přidá stejný objem pracovního roztoku amboceptoru (JE NUTNÉ PŘIDÁVAT AMBOCEPTOR DO ERYTROCYTŮ, NE NAOPAK!) – inkubace 15-30 min v lednici. Na 1 desku se připraví 4 ml hemolytického systému (2 ml suspenze + 2 ml amboceptor). 3. Rozmístění vzorků na mikrotitrační destičce: Každý vzorek séra se pipetuje v dubletu (2 sloupce). Máme 2 vzorky séra, takže obsadíme první 4 sloupce destičky. Do jamek B,C,D a F,G napipetujte 100 ml fyz. roztoku. Do jamek A a B napipetujte 100 ml séra ředění I (40x). V jamkách B promíchejte špičkou obsah a přepipetujte z nich 100 ml do jamek C. V jamkách C promíchejte špičkou obsah a přepipetujte z nich 100 ml do jamek D V jamkách D promíchejte špičkou obsah, odsajte z nich 100 ml a vyhoďte. Do jamek E a F pro příslušný vzorek napipetujte 100 ml séra ředění II (60x). V jamkách F promíchejte špičkou obsah a přepipetujte z nich 100 ml do jamek G. V jamkách G promíchejte špičkou obsah, odsajte z nich 100 ml a vyhoďte. Do liché jamky H napipetujde 100 ml fyz. roztoku, do sudé jamky H 100 ml destilované vody. Do všech jamek napipetujte 100 ml hemolytického systému (multikanálovou pipetou). 4. Přikryjte desku víčkem a inkubujte 60 min v termostatu při 37°C. 5. Centrifugace destičky 5 min při 2000 ot./min (centrifuga MPW, prog. 22) 6. Po centrifugaci přepipetovat 100ul z každé jamky do nepoužitých jamek mikrotitrační destičky při zachování pořadí a umístění jamek. 7. Změřit na readeru absorbanci při 541 nm. (ELISA reader SUNRISE, program CH50) 8. Výsledky jamek v dubletu vždy zprůměrovat kromě jamek v řadě H. Seřadit dle stoupající koncentrace séra v jamce – tzn. dle stoupající hemolýzy.