Elektroforetické techniky Mgr. Jana Gottwaldová (Aktualizace 2022: MUDr. Ing. David Zeman) OKB FN Brno Osnova 1.Princip elektroforézy 2.Popis základního technického vybavení 3.Rozdělení elektroforetických technik (volná a na nosičích) 4.Zónová elektroforéza – gelová (AGE, PAGE) 5.Hlavní typy gelové elektroforézy ( nativní, denaturační, kontinuální, diskontinuální….) 6.Zpracování gelu po separaci 7.Speciální elektroforetické techniky (IEF, CE…..) 8.Praktické využití elektroforetických technik v klinické zdravotnické laboratoři 9. 9. • Elektroforéza •Elektromigrační separační metoda •Princip: •využití rozdílné pohyblivosti (migrace) •nabitých částic (iontů) v elektrickém •poli. Při elektroforéze se jedná o •mechanický přenos hmoty vlivem •působení elektrického pole. Princip elektroforézy •Elektroforéza využívá schopnosti nabitých částic pohybovat •se v elektrickém poli. Toto elektrické pole je vytvořeno •vložením konstantního stejnosměrného napětí mezi dvě •elektrody . • •Na nabitou částici o náboji Q •působí v elektrickém poli •o intenzitě E dvě síly: Øelektrostatická síla F1- •která jí uvádí do pohybu Øodpor viskózního prostředí F2 - •který jí brzdí • Princip elektroforézy •hnací silou pohybu částice je rozdíl mezi elektrostatickou silou F1 a odporem prostředí F2. •v počátečním okamžiku je rychlost v nulová, částice je uvedena do pohybu elektrostatickou silou F1. •s rostoucí rychlostí v roste síla F2 (odpor prostředí) tak dlouho, až se obě síly působící na částici vyrovnají a nastane stacionární stav: • F1 = F2 ; QE = kv Elektroforetická pohyblivost - µ •Rychlost pohybu určité částice v elektrickém poli o jednotkové •intenzitě je definována jako elektroforetická pohyblivost µ •Ve stacionárním stavu: F1 = F2 ; QE = kv, •kde: k=6πrη a E=1 [Volt/cm] elektroforetická pohyblivost: µ • • • • • •Q…náboj •r… poloměr částice •η...vizkozita prostředí • µ = Q/ 6πrη [cm2 s-1V-1] Technické uspořádání elektroforetické aparatury • Napájecí zdroj •Funkce: dodání elektrické energie. • napájecí zdroje umožňují provoz v podmínkách konstantního proudu, napětí nebo výkonu, které jsou nastavitelné. •Parametry E=240 V, I=10 mA na 1 cm •Při průtoku proudu elektrolytem vziká tzv. Jouleovo teplo: Q nebo H (heat)= E ∙ I ∙ t • Kde: E = napětí (V), I = proud (A), t = čas (s) • Pufry při elektroforéze •Funkce pufru: •nese vložený proud •stanoví pH, při kterém probíhá elektroforetické děleni •určuje výsledný elektrický náboj rozpuštěné látky • •Iontová síla pufru ovlivňuje : •vodivost nosného média •tloušťku iontové atmosféry okolního náboje molekuly •rychlost migrace •ostrost elektroforetických zón • • Při elektroforetické separaci slouží pufr jako multifunkční komponenta. Rozdělení elektroforetických technik •Volná elektroforéza •provádí se ve vodných roztocích, kde •částice putují směrem k elektrodě • s opačnou polaritou. • •Elektroforéza na •nosičích •chromatografický papír, škrob, acetyl- •celulóza, agar, agaróza, polyakrylamid -gely mají dvojí funkci: 1) brání rozší- •ření píků vlivem teploty (antikonvekční •efekt), 2) fungují jako molekulární síto •(zejm. PAG – sítový efekt) Při této technice se elektroforéza provádí ve vodných roztocích (elektrolytech), kde částice putují směrem k elektrodě s opačnou polaritou. Rychlost migrace a vzájemné oddělování částic je dáno velikostí náboje částice a použitým gradientem napětí. Separaci ruší konvenční proudy a difúze v kapalině, které vznikají vlivem tepla (Joulovo teplo). Tato technika se již téměř nepoužívá. Zónová elektroforéza •nosiče pro zónovou elektroforézu jsou nerozpustné ve vodě, porézní, s co nejmenšími absorpčními schopnostmi •prvními použitými nosiči byly neklížený (chromatografický) papír, acetát celulózy, škrob a celulóza •v současné době se jako nosiče používají hlavně gely – agarózový (AGE) a polyakrylamidový gel (PAGE) • •Při přípravě gelu je možné ovlivňovat stupeň •polymerace (zesíťování) - tedy velikost pórů. • Zónová elektroforéza •Rychlost migrace proteinů závisí na těchto •faktorech: •Elektrický náboj molekuly •Velikost a tvar molekuly •Síla elektrického pole •Vlastnosti nosného média •Teplota •Proteiny s rozdílnou pohyblivostí migrují v gelu •jako pásy (bandy). • Elektroforéza v agarózovém gelu •lineární polysacharid, jehož základní strukturní jednotka je složena z D-galaktosy a 3,6-anhydro-L-galaktosy •příprava tzv. gelifikací agarózy: agaróza má za nižších teplot podobu gelu, gelifikuje působením vyšší teploty. •Bod tání závisí na koncentraci a typu agarózy asi 85-100 º C, gelifikace při poklesu teploty pod 45-50 º C. •nejčastěji se používá 1-2 % gel agarózy •velikost pórů v gelu závisí na koncentraci agarózy, typicky se pohybuje mezi 100 - 300 nm. Elektroforéza v polyakrylamidovém gelu •fyzikální vlastnosti gelu a velikost pórů jsou dány podílem polyakrylamidu v gelu a stupněm jeho zesíťování. •nejčastěji používané koncentrace polyakrylamidu jsou 5-15%, přičemž koncentrace n, n´-methylenbisakrylamidu je obvykle 3-5% celkového množství akrylamidu. •nevýhodou je vysoká toxicita akrylamidu a n,n´-metylenbisakrylamidu. • Hlavní typy gelové elektroforézy •Gelová nedenaturační elektroforéza •Nativní gelová elektroforéza •Gelová denaturační elektroforéza •SDS gelová elektroforéza •Kontinuální zónová elektroforéza •Diskontinuální zónová elektroforéza • Gelová nedenaturační elektroforéza •Nativní gelová elektroforéza • probíhá bez denaturačních činidel •někdy jsou používány relativně vysoké, nebo nízké hodnoty pH •migrace proteinů gelem závisí na jejich náboji, velikosti a tvaru. •citlivost elektroforézy je dána charakterem pórů gelu Nativní gelová elektroforéza •Faktory ovlivňující mobilitu proteinů v nativním gelu: 1.náboj proteinu: •sekvence aminokyselin – počet kyselých a bazických zbytků •pH roztoku •třírozměrná struktura proteinu • 2.velikost a tvar proteinu • •3. koncentrace a stupeň zesíťování gelu •gel obecně snižuje mobilitu proteinů, v závislosti na jejich volné pohyblivosti (bez přítomnosti gelu) •větší molekuly jsou gelem ovlivněny vice než menší molekuly •složení gelu může být ovlivněno tak, že dělení probíhá na základě rozdílné velikosti molekul Gelová denaturační elektroforéza •SDS gelová elektroforéza : •proteiny jsou denaturovány dodecylsíranem sodným (SDS) a β-merkaptoethanolem •Proteiny jsou separovány podle své molekulové hmotnosti • SDS gelová elektroforéza •SDS je anionaktivní detergent, který nese poměrně vysoký náboj, a proto ve vazbě na bílkovinu vyrovnává nábojové rozdíly bílkovin, které se potom pohybují v gelu jen podle velikosti. •Vzorek proteinu se zpracuje s tzv. vzorkovým pufrem - obsahuje SDS a redukční činidlo β-merkaptoethanol. •Působením těchto látek dojde k rozrušení kvarterní, terciární a do značné míry i sekundární struktury. • SDS gelová elektroforéza •Všechny bílkoviny váží SDS v konstantním poměru, asi •1,4 g SDS na 1 g bílkoviny, a tím charakteristicky mění •svou konformaci. •Výsledné komplexy SDS-bílkovina: •mají stejnou hodnotu povrchového náboje •konformace bílkovin se do jisté míry unifikuje •relativní molekulová hmotnost bílkoviny odpovídá velikosti jejího komplexu s SDS. • SDS gelová elektroforéza •Pro vlastní odhad molekulové hmotnosti neznámého •proteinového vzorku se používají komerční směsi proteinů •standardy. Hlavní typy gelové elektroforézy •Kontinuální zónová elektroforéza •Jde o nejběžnější typ elektroforézy, kdy vlastní separace probíhá v jednom médiu a většinou v jediném typu pufru •Diskontinuální zónová elektroforéza •Pro separaci se používají gely o různé koncentraci, pufry s gradientem pH Kontinuální zónová elektroforéza •proteiny migrují v zóně, která je minimálně tak široká jako je výška vzorku v gelové jamce při nanesení. Z toho důvodu jsou pak proteinové pásy v konečném výsledku hůře rozlišené. •složení elektrodového a gelového pufru je stejné. Tuto techniku nelze použít pro velmi zředěné vzorky. •kontinuální elektroforéza může probíhat na kterémkoliv typu gelu - typická je především pro agarózové gely Diskontinuální zónová elektroforéza •diskontinuita může být jak v koncetracích gelu, tak především v pH a iontové síle. •dnes hlavní elektroforetickou technikou pro analýzu proteinů •oproti kontinuální elektroforéze má vysoké rozlišení a citlivost. •používá se dvou gelů tzv. koncentrujícího („stacking“) gelu nahoře a separačního („running“) gelu dole. •typická je především pro polyakrylamidové gely • Diskontinuální zónová elektroforéza Rozdělení dle uspořádání (orientace nosného média) •Vertikální gelová elektroforéza •Horizontální gelová elektroforéza • Zpracování gelu po separaci - barveni gelů •Po proběhnuté elektroforéze je nutné gel rychle sušit nebo fixovat fixačním roztokem (obsahuje kyselinu, např. kys. octová)- dojde k denaturaci proteinů a jejich imobilizaci v nosném médiu, aby se zabránilo difúzi jednotlivých zón. •Dále je nutné gel obarvit, aby došlo k vizualizaci jednotlivých proteinových frakcí. Po odmytí přebytku barviva se gel suší. • Množství barviva, které se během barvení váže na proteiny, záleží na mnoha faktorech. Je ovlivněno typem proteinu nebo stupněm denaturace při fixaci. Zpracování gelu po separaci - barveni gelů Barva Použití Amax (nm) Amidočerň 10B barvení proteinů 620 Coomassie Brilliant Blue G250 590 Coomassie Brilliant Blue R250 595 Fast Green 610 Acid Violet imunoelektroforéza, imunofixace Alcian Blue glykoproteiny 630 Basický fuchsin glykoproteiny bohaté na sialovou kyselinu, nukleové kyseliny 550 Methyl Green DNA 635 Ethidium bromid, SYBR Green (fluorimetrická detekce) Bromcresol Blue Methylene Blue RNA 665 Pyronine Y 510 Toluidine Blue Y 620 Vyhodnocení elektroforeogramů – detekce a kvantifikace •Po elektroforetické separaci a barvení, je možné •kvantifikovat jednotlivé zóny jako procentuální •podíl přímou denzitometrii. • •Denzitometr je přístroj, který slouží k vyhodnocení •hustoty zbarvení v plošném uspořádání. Jedná se •o postup, který je podobný fotometrickému •stanovení (liší se v uspořádání), zaznamenává •měnící se hodnotu absorbance v závislosti na •intenzitě zbarvení. Denzitometrie •Kvantitativní hodnocení intenzity zbarvení •Měření absorpce světla jednotlivými zónami (pásy) •Pohyblivý světelný zdroj (laser nebo lampa s bílým světlem s filtry) je veden nad gelem a na každém místě gelu je měřena a počítačově zpracována absorpce •U jednorozměrných gelů získáváme křivku extinkce ln I0/I (I0 = intenzita světla ze zdroje, I = intenzita měřená detektorem) podél elektroforetické stopy; u dvourozměrných gelů je extinkce zobrazena jako funkce povrchu gelu •Neplatí zde Lambertův-Beerův zákon! (proč?) •Závislost absorpce na koncentraci bílkoviny při extinkci >2,5 (lampa s bílým světlem) nebo >4 (laser) se stává hyperbolická nebo sigmoidní •Slabé pásy/stopy jsou často nadhodnocené, proteiny ve vysoké koncentraci podhodnocené Vyhodnocení elektroforeogramů – detekce a kvantifikace •Při denzitometrii se měří intenzita záření procházejícího průhlednou plochou, získává se grafický záznam fotometrovaného úseku. •Jednotlivé frakce dělené směsi tvoří na záznamu v ideálním případě souměrné křivky zvonovitého tvaru. •Plocha po křivkou těchto píků připadající jednotlivým frakcím, je úměrná relativnímu zastoupení jednotlivých frakcí v dělené směsi •doporučené jednotky (ČSKB): • jedniny (př. α1 globuliny=0,03) •používají se % • (př. α1 globuliny=3%) •přepočet na g/L z S-CB • Vyhodnocení elektroforeogramů – detekce a kvantifikace •Elektroforeogram se automaticky posunuje nad štěrbinou, kterou prochází světlo zvolené vlnové délky (400 – 700 nm), v místě frakcí dochází k částečné absorpci záření – to se projeví při dopadu na detektor. •Po zpracování signálu integrátorem získáme číselné výsledky jednotlivých frakcí. • Speciální elektroforetické techniky • •Izoelektrická fokusace (IEF) •Dvojrozměrná elektroforéza (2-DE) •Kapilární elektroforéza (CE = capillary electrophoresis) Izoelektrická fokusace (IEF) •Metoda IEF se používá k separaci amfoterních látek - aminokyseliny, peptidy a proteiny. •V závislosti na pH mají amfoterní molekuly kladný nebo záporný celkový náboj („net charge“). •Pro posouzení tohoto náboje při různých hodnotách pH je důležitá hodnota izolektrického bodu (pI). Nábojové vlastnosti AK a bílkovin •Při pH < pI jsou kationty •Při pH = pI jsou amfolyty navenek elektroneutrální •Při pH > pI jsou anionty •Disociační konstanty K1 a K2 jsou vyjadřovány logaritmicky jako pK = pH, při kterém se v roztoku nacházejí stejná množství protonovaných (asociovaných) a neprotonovaných (disociovaných) forem •pI = izoelektrický bod = pH, při které molekula existuje jako amfolyt s nulovým výsledným nábojem •pI = ½ [pK1 + pK2]; u AK s ionizovatelnou skupinou v postranním řetězci uvažujeme hodnoty pK „na obě strany“ od elektroneutrálního zwitteriontu (pI leží mezi hodnotami pK zwitteriontu a jeho konjugované kyseliny) •Při fyziologickém pH je většina bílkovin záporně nabitá Analýza titračních křivek: gel s amfolyty - po IEF (vytvoření pH gradientu) otočíme gel o 90° a do žlábku naneseme analyzované bílkoviny, necháme probíhat elektroforézu. Kde je pI hledané bílkoviny? obr. z: Westermeier R. Electrophoresis in practice. Wiley-VCH, Weinheim 2005 Izoelektrická fokusace (IEF) •využívá gely s velkými póry, které obsahují směs syntetických alifatických polyamino-polykarboxylových skupin, které se označují jako nosné amfolyty. •jsou voleny tak, že pokrývají široký rozsah izoelektrických bodů. Jakmile gel připojíme ke zdroji elektrického napětí, amfolyty vytvoří stabilní lineární gradient pH, s nejnižší hodnotou pH při anodě a nejvyšší při katodě. •Stabilita amfolytů v gelu je zajišťována silnou kyselinou (anoda) a silnou zásadou (katoda). •Anodový roztok je kyselý (k. fosforečná, k. octová, kyselý pufr), katodový roztok je bazický (NaOH, triethylamin, bazický pufr) Izoelektrická fokusace (IEF) •Proteiny se po nanesení na gel budou pohybovat pH gradientem až do míst, kde se pH gelu vyrovná s jejich izoelektrickým bodem (pI). •V tomto bodě je protein elektricky neutrální – jakmile by se z této polohy vychýlil na jakoukoli stanu, získal by kladný, nebo záporný náboj a vrátil by se zpět. •Výsledkem jsou velmi úzké zóny na gelu (odtud název „fokusace“ - „zaostřování“). •rozlišovací schopnost této metody je vysoká a lze jí oddělit i proteiny, lišící se o 0,01 jednotky svých pI. •Proteiny, které se liší nábojem, ale mají prakticky stejnou molekulovou hmotnost (např. izoenzymy), lze separovat pouze IEF. Izoelektrická fokusace (IEF) •IEF se obvykle provádí v 3-4% polyakrylamidových gelech, nebo v agaróze. •Do roztoku pro přípravu gelu se přidávají amfolyty v koncentraci 2-2.5% •Jedná se o směs nízkomolekulárních oligoamino-oligokarboxylových kyselin, které mají rozdílné pI hodnoty. •Gradienty se tvoří nejčastěji v rozmezí pH 3-10, nebo v užším. •Jinou možností tvorby gradientu je použití immobilinů. Gradient je v tomto případě immobilizován v gelu, toho se dosahuje použitím akrylamidových derivátů obsahujících ionizovatelné skupiny s pufrujícími vlastnostmi. Izoelektrická fokusace (IEF) •Imobilizovaný pH gradient v polyakrylamidovém gelu •s disociovatelnými karboxy- a aminoskupinami, R= kyselá nebo •bazická pufrující skupina Izoelektrická fokusace (IEF) •Izoelektrická fokusace se provádí ve vertikálním nebo horizontálním uspořádání. • Hotové IEF gely s amfolyty nebo immobiliny se dodávají komerčně spolu s přístroji pro automatizovanou IEF. •Vzorky se obvykle nanášejí na katodové straně. Dvojrozměrná elektroforéza (2-DE) • je analytická a preparativní technika • metoda je schopná účinně separovat komplexní směsi bílkovin. • 2-DE je klíčovou technikou proteomiky •Poprvé byla popsána již v r. 1975 (O´Farrellem a •Klosem), rozšířena byla až s rozvojem proteomiky •v posledních letech. •Proteomika je obor, který se zabývá globálním hodnocením exprese genetické informace na úrovni bílkovin (proteomem), rovněž však zkoumá strukturu a interakce proteinů. Dvojrozměrná elektroforéza (2-DE) •Podstatou 2-DE je využití dvou odlišných fyzikálně chemických vlastností proteinů: • v prvním rozměru jsou proteiny rozděleny podle jejich izoelektrického bodu (pI) - pomocí izoelektrické fokusace (IFE) •v druhém rozměru se proteiny dělí v závislosti na jejich molekulové hmotnosti použitím elektroforézy v polyakrylamidovém gelu a SDS (SDS -PAGE). Dvojrozměrná elektroforéza (2-DE) •Vizualizace: barvení 2-DE gelů •proteiny jsou vizualizovány některou z barvících či značících metod (chemických nebo radioaktivních). • Výsledné "mapy" proteinů lze porovnávát např. mezi experimentálním a kontrolním vzorkem nebo mezi vzorky odebranými od pacientů s konkrétním onemocněním oproti zdravým kontrolám a identifikovat tak odlišně exprimované proteiny, které mohou mít souvislost s patogenezí daného onemocnění. •Proto je třeba ověřit identitu těchto odlišně exprimovaných proteinů, nejčastěji pomocí "vyříznutí" oblasti gelu vykazující odlišnost a její následné analýzy pomocí hmotnostní spektrometrie. Dvojrozměrná elektroforéza (2-DE) Dvojrozměrná elektroforéza (2-DE) • Dvojrozměrná elektroforéza (2-DE) •Nevýhody: •problematická analýza: velmi zásaditých proteinů, proteinů málo rozpustných ve vodné fázi a membránových proteinů •senzitivita (proteiny přítomné ve velmi nízkých koncentracích vyžadují speciální typy barvení), •reproducibilita mezi gely •špatná automatizovatelnost - ve srovnání s obdobnými technikami pro nukleové kyseliny Kapilární elektroforéza (CE = capillary electrophoresis) •Zvláštním způsobem elektroforézy je tzv.kapilární •elektroforéza, která vyžívá elektrokinetických •principů elektroforézy a elektroosmózy k •separaci látek uvnitř kapiláry. • Kapilární elektroforéza - Elektroosmotický tok (EOF) • •Povrch křemenné kapiláry •obsahuje negativně nabité funkční •skupiny, které přitahují pozitivně nabité ionty. • Pozitivně nabité ionty migrují •k negativní elektrodě a unáší •molekuly rozpouštědla stejným •směrem. •Tento celkový pohyb kapaliny je •nazýván elektroosmotický tok. •Během separace se neutrální •molekuly pohybují stejným směrem •jako EOF (s nepatrnou vzájemnou separací). •Pozitivně nabité ionty jsou •EOF urychlovány, negativně nabité •naopak zpomalovány. http://biochemie.sweb.cz/x/metody/foto/elektroforeza/tok.jpg Kapilární elektroforéza - Elektroosmotický tok (EOF) •Nejdůležitější praktické důsledky EOF: •• elektrolyt je pumpován od anody ke katodě •Různě nabité molekuly v separovaném vzorku se pohybují různými směry podle náboje, ale všechny jsou neseny ve směru katody díky elektroosmóze. •Kladně nabité molekuly dosáhnou katody jako první, neboť elektroforetická migrace i elektroosmotický tok mají stejný směr. •Směr elektroosmotického toku však může být změněn přidáním •povrchově aktivních chemických aditiv do elektrolytu. Kapilární elektroforéza – technické uspořádání • křemenné kapiláry (čistý oxid křemičitý) s malým průměrem, které jsou vně potažené tenkou vrstvou polyimidu • hydroxylové skupiny křemene mohou disociovat a nabíjet tak vnitřní stěnu kapiláry •vnější průměr je obvykle 180 – 375 µm • vnitřní průměr se pohybuje mezi 20 -180 µm. • Celková délka kapiláry je 20 cm až několik metrů. •Kapiláry slouží jako elektroforetická komora, která je terminálním koncem připojena na detektor •přes rezervoár s pufrem je napojena na vysokonapěťový zdroj. http://biochemie.sweb.cz/x/metody/foto/elektroforeza/kapilarni.jpg Kapilární elektroforéza – technické uspořádání •Největší výhodou CE oproti tradičním •elektroforetickým technikám je možnost účinného •odvodu tepla během separace. To umožňuje •použití vysokého napětí v rozmezí 25 – 30 kV, což •vede k zvýšení separační účinnosti a redukci •doby separace, v některých případech až pod 1 •min. 1.Elektroforézu řadíme mezi: separační – optické – elektrochemické metody 2.Elektroforetická pohyblivost je vyšší: s rostoucím nábojem částice - s větší velikostí částice 3.Jaká je funkce pufru: snižuje Jouleovo teplo – nese vložený proud - udává výsledný náboj separovaných částic 4.Koncentrace agarózového gelu je obvykle:1-2% - 5-7% - 10-11% 5.Co se používá k fixaci proteinů v gelu: vyšší teplota - roztok kyseliny - roztok zásady 6.Jak se provádí vizualizace proteinů v gelu: barvení gelu – sušení gelu – promytí gelu 7.Jak se provádí kvantifikace jednotlivých frakcí na gelu? 8.V jakých jednotkách se uvádí kvantita jednotlivých frakcí po elektr. separaci? % - jedniny – g/L 9.Jaké jsou faktory ovlivňující separaci u SDS elektroforézy: náboj a tvar molekuly – molekulová hmotnost 10.Princip izoelektrické fokusace – využívá k separaci proteinů rozdílné: pH – pI – náboj 11.Dvojrozměrná elektroforéza používá dvě rozdílné elfo techniky: • CE + IEF – IEF+SDS-PAGE •12. Kapilární elektroforéza - EOF (běžné uspořádání se záporně nabitou stěnou kapiláry): pozitivně nebo negativně nabité ionty jsou urychlovány ? Praktické využití elektroforetických technik v klinické zdravotnické laboratoři •Elektroforéza bílkovin krevního séra • •Elektroforéza bílkovin moče • •Elektroforéza bílkovin mozkomíšního moku •Elektroforéza bílkovin v sekretu Elektroforéza bílkovin krevního séra • •Gelová elektroforéza •Vysokorozlišovací gelová elektroforéza (HR elektroforéza) •Gelová elektroforéza s následnou imunofixací • Elektroforéza bílkovin krevního séra - Gelová elektroforéza - SPE •vzorky nanášeny v blízkosti katodického konce nosného média, které je saturováno alkalickým pufrem (pH 8,6) s nízkou iontovou silou (asi 0,05M) •Jako nosné médium se nejčastěji používá agarózový gel •Nosné médium je spojeno s dvěma elektrodami a proud prochází nosným médiem k separovaným proteinům. •Typické parametry při elektroforetické migraci jsou proud 10 mA na 1 cm šířky gelu s časem migrace asi 10 min. (napětí 240 V, teplota 20 º) •Všechny hlavní sérové proteiny nesou při pH 8,6 negativní náboj a migrují k anodě. •Při standardně používané SPE se sérové proteiny dělí na 5-6 proteinových frakcí. Elektroforéza bílkovin krevního séra - Gelová elektroforéza - SPE •Každá zóna obsahuje jeden a více sérových proteinů. •Nejvíce anodicky putuje albumin, následují α1-globuliny, α2-globuliny, β1-globuliny, β2-globuliny a gamaglobuliny. •Šířka proteinového bandu frakce závisí na počtu proteinů, které jsou ve frakci přítomny. Elektroforéza bílkovin krevního séra - Gelová elektroforéza - SPE • Elektroforéza bílkovin krevního séra - Gelová elektroforéza - SPE •Po elektroforetické separaci jsou proteinové •frakce: 1. zafixovány v nosném médiu ponořením do •kyselého fixačního média (např. kys. octová): • dojde k denaturaci proteinů a • jejich imobilizaci v nosném médiu. •2. v dalším kroku jsou proteiny vizualizovány •barvením. Nejčastěji se jako barvivo používá •Amidočerň 10B nebo Coomassie blue. Elektroforéza bílkovin krevního séra: Vysokorozlišovací elektroforéza (HR elektroforéza) •Bílkoviny séra dělí na přibližně 10 frakcí. •Každá frakce obsahuje jeden a více sérových •proteinů. •Složení gelu, podmínky elektroforézy a •volba barvičky dovoluje vynikající rozlišení a •vysokou senzitivitu zvláště v gama zóně. •Gely je možné obarvit amidočerní nebo kyselou violetí. •Obarvené elfogramy lze vyhodnotit vizuálně a •denzitometrií. Vysokorozlišovací elektroforéza (HR elektroforéza) Elektroforéza bílkovin séra (pozice 2, 5, 7, 9-11, 13-16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30) a moče (pozice 1, 3, 4, 6, 8, 12, 17, 19, 21, 23, 25, 27, 29) – Hydragel β1-β2 15/30 (Sebia) Paraprotein v pozicích 6 (moč), 16 (sérum), 20 (sérum), 22 (sérum), 23 (moč), 24 (sérum), 25 (moč – v beta frakci), 28 (sérum) a 30 (sérum); v sérech na pozicích 20, 22, 28 a 30 je patrná výrazná redukce polyklonálních gamaglobulinů; zvýšená frakce alfa2-globulinů v pozicích 2, 10, 24, 30 (séra) Screeningová imunofixace (Hydragel Penta 6/12 IF, Sebia) Elektroforetická stopa a vpravo od ní stopa stejného vzorku fixovaného s pentavalentním antisérem (G, A, M, kappa, lambda) pozitivní výsledek imunofixace M-Ig atypicky migrujícího v zóně alfa2-globulinů (horní řada, 4. stopa zleva – sérum), ve všech ostatních vzorcích je výsledek screeningové imunofixace negativní Elektroforéza bílkovin krevního séra: Elektroforéza s následnou imunofixací •Proteiny separované elektroforézou na alkalicky pufrovaných agarózových gelech jsou inkubovány se specifickými antiséry proti těžkým řetězcům γ (IgG), α (IgA), μ (IgM) a lehkým volným i vázaným κ (kappa) a λ (lambda) řetězcům. •Po odstranění nezreagovaných bílkovin jsou precipitáty obarveny kyselou violetí nebo amidočerní. • Elektroforeogramy se hodnotí vizuálně a pátrá se po přítomnosti monoklonálních bílkovin. Elektroforéza s následnou imunofixací •Provádí se ve čtyřech krocích: •1. Separace proteinů elektroforézou na agarózovém gelu. •2. Imunofixace (imunoprecipitace) proteinů rozdělených elektroforézou – příslušné migrační stopy jsou překryty jednotlivými antiséry. Antiséra difundují do gelu a precipitují přítomné antigeny. Proteiny v referenční stopě jsou jsou fixovány fixačním roztokem. •3. Neprecipitované, rozpustné proteiny jsou z gelu odstraněny odsátím a promytím. Komplex antigen-protilátka zůstává v gelové matrix. •4. Precipitované proteiny jsou vizualizovány obarvením. Elektroforéza s následnou imunofixací •Elektroforetické dělení vzorku probíhá simultánně v šesti stopách. Po elektroforéze – první stopa (ELP) slouží jako referenční. Zbývajících 5 stop je použito k nanesení specifických antisér – proti těžkým řetězcům (G, A, M) a anti-kappa a anti-lambda volným a vázaným lehkým řetězcům. •Imunofixační proužky jsou porovnány s odpovídajícími frakcemi referenčního vzorku – odpovídající proužek by měl mít stejnou migrační pozici. Typizace paraproteinu – elektroforéza s následnou imunofixací ELP – elektroforéza s fixací všech bílkovin; G, A, M, K, L – stopy se selektivní fixací antiséry proti řetězcům γ, α, μ, κ, λ vlevo dole: volné kappa v moči; vpravo dole: fyziologický nález (polyklonální Ig); vlevo nahoře: paraprotein IgMκ v séru; vpravo nahoře: volné κ v moči u téhož pacienta Obsah obrázku stůl Popis byl vytvořen automaticky Elektroforéza s následnou imunofixací Elektroforéza bílkovin moče (UPE = urine protein electrophoresis) •Elektroforeogram bílkovin moče je podobný rozdělení bílkovin v séru - intenzita frakcí závisí na filtrační schopnosti ledvin. •K analýze používáme zahuštěné nebo nezahuštěné vzorky moče. • •Zahuštění se provádí na koncentraci bílkoviny asi 15 - 20 g/L pomocí •koncentračních zkumavek (Vivaspin 2, Sartorius): •Tyto zkumavky obsahují speciální hydrofilní membránu, což znesnadňuje vazbu proteinů. •Membrána je vyrobena z polyethylensulfonátu (PES), triacetátu celulózy (CTA) nebo ze stabilizované celulózy (Hydrostat), má cutoff hodnotu podle molekulové hmotnosti pro kterou je nepropustná (5,10 a 30 kDa). •Stabilita moče pro vyšetření elektroforézy je minimálně 1 týden při teplotě 2 – 8 °C, není doporučeno vzorky mrazit. Elektroforéza bílkovin moče (UPE = urine protein electrophoresis) •Přehled nejvíce používaných elektroforetických technik: •Gelová elektroforéza UPE (urine protein electrophoresis) •Gelová elektroforéza s následnou imunofixací (uIFE=urine immunofixation electrophoresis) •Gelová elektroforéza na agarózovém gelu v kombinaci s protilátkami proti vybraným proteinům •SDS – elektroforéza na agarózovém (SDS AGE) nebo polyakrylamidovém gelu (SDS PAGE) Gelová elektroforéza na agarózovém gelu v kombinaci s protilátkami proti vybraným proteinům •Postup:Vzorek zahuštěné moče je současně podroben •elektroforéze v 9 stopách na alkalicky pufrovaném •agarózovém gelu (pH 9.1) : Ø po elektroforéze slouží jedna stopa (ELP) jako referenční pro znázornění elektroforetického uspořádání bílkovin ve vzorku. Øzbývajících osm stop je imunofixováno příslušným antisérem. Ønevysrážené, rozpustné proteiny jsou z gelu odstraněny pomocí odsávání a promývání. Ø precipitovaný komplex antigen-protilátka je zachycen v matrici gelu. Øvysrážené bílkoviny jsou vizualizovány barvením kyselou violetí, přebytečné barvivo se odstraňuje kyselým roztokem. Gelová elektroforéza na agarózovém gelu v kombinaci s protilátkami proti vybraným proteinům •Bílkoviny jsou imunofixovány specifickými antiséry proti : Ø tubulární proteiny: ß2 mikroglobulin, protein vázající • retinol (RBP) a α1 mikroglobulin, Ø glomerulární proteiny: albumin a α2 mikroglobulin, Ø těžké řetězce gama, alfa a mu (s trivalentním • antisérem), Ø lehké řetězce Kappa, volné i vázané, Ø lehké řetězce Lambda, volné i vázané, Ø lehké volné řetězce Kappa , Ø lehké volné řetězce Lambda. Gelová elektroforéza na agarózovém gelu v kombinaci s protilátkami proti vybraným proteinům SDS – elektroforéza na agarózovém (SDS AGE) nebo polyakrylamidovém gelu (SDS PAGE) •Používají se neutrálně pufrované SDS gely - separují močové bílkoviny podle jejich molekulové hmotnosti a zcela jasně odlišuje bílkoviny tubulární od bílkovin glomerulárního původu. •Výsledek elektroforetického dělení proteinů obarvených kyselou violetí je vizuálně porovnáván s proteinovými markery v referenční stopě. •provádí se v nezahuštěné moči, •minimální detekční hladina je 15 mg/L na frakci. SDS – elektroforéza na agarózovém (SDS AGE) nebo polyakrylamidovém gelu (SDS PAGE) •V přebytku detergentu SDS jsou bílkoviny změněny v komplexy, kde dochází k rozrušení nativní struktury bílkovin a zaujetí uniformní struktury o stejném negativním elektrickém náboji na jednotku hmotnosti. •Používají se gely s vysokou koncentrací – 10%, kde dochází k rozdělení močových bílkovin dle jejich molekulární hmotnosti. •Jednotlivé bílkoviny tubulárního původu (M.V. < 65 - 70 kDa) jsou jasně odlišeny od glomerulárních (M.V. > 65 - 70 kDa). SDS – elektroforéza na agarózovém (SDS AGE) nebo polyakrylamidovém gelu (SDS PAGE) • • Elektroforéza bílkovin moče – klinický význam • Poskytuje kvalitativní pohled na proteinurii. • užitečnou informací při diagnostikování selhání ledvin. • Identifikace hlavních bílkovin v moči pomáhá přesně určit typ poškození ledvin (tubulární, glomerulární nebo smíšený) • dále pomáhá při identifikaci monoklonálních gamapatií (Bence Jonesovy bílkoviny). Elektroforéza bílkovin mozkomíšního moku •Izoelektrická fokusace s detekcí oligoklonálních IgG pásů: •metoda zahrnuje izoelektrofokusaci na agarózovém gelu, následovanou immunofixací s anti-IgG antisérem. •Vzorky CSF a séra od téhož pacienta jsou pak vizuálně porovnány. •Citlivost metody dovoluje analýzu CSF bez předchozího zahušťování. Elektroforéza bílkovin mozkomíšního moku •Test se provádí ve dvou stupních : 1.Izoelektrofokusace na agarózovém gelu k rozdělení •proteinů ve vzorcích CSF a séra. •2. Immunofixace anti IgG antisérem značeným enzymem •(peroxidáza) určeným k detekci IgG oligoklonálních •proužků a demonstrace rozdílů nebo nepřítomnosti IgG v •CSF a v séru. •K potvrzení intrathekální syntézy Ig je nutno analyzovat sérum a mozkomíšní mok paralelně ve stejných koncentracích IgG, aby byl demonstrován rozdíl v distribuci IgG. 260px-Oligoklon%C3%A1ln%C3%AD_p%C3%A1sy •Základní typy : •Typ 1 – v séru i v moku pouze polyklonální IgG – normální nález; •Typ 2 – oligoklonální proužky pouze v likvoru – lokální syntéza IgG (např. u roztroušené sklerózy); •Typ 3 – oligoklonální proužky v likvoru a další oligoklonální proužky v likvoru i v séru – lokální syntéza IgG a produkce protilátek v organismu (např. chronická infekce CNS, roztroušená skleróza); •Typ 4 – identické oligoklonální proužky v séru i moku (tzv. „zrcadlový“ obraz proužků v séru a v likvoru – dochází k průniku protilátek z krve do likvoru) – systémová imunitní aktivace bez lokální syntézy IgG v CNS; •Typ 5 – identické monoklonální proužky v séru i moku v krátkém úseku pH gradientu, jde o přítomnost monoklonálního paraproteinu v likvoru sérového původu (myelom, monoklonální gamapatie) 260px-Oligoklon%C3%A1ln%C3%AD_p%C3%A1sy Typy IEF nálezu: IF (Sebia) typ 1 – typ 2 – typ 3 – typ 4 – typ 5 dvojice likvor (vlevo), sérum (vpravo) IEF v polyakrylamidovém gelu (Pannewitz-Makaj K et al, Diagnostics 2021, 11(1): 37) Elektroforéza bílkovin v sekretu – průkaz likvorey •průkaz přítomnosti mozkomíšního moku (likvorey) provádíme v tekutině z ucha, nosu, úst nebo z operační rány •nejčastěji se jedná o pacienty po úrazech, operacích nebo po komplikovaných infekčních zánětech centrálního nervového systému •dříve se pro detekci likvorey využívalo stanovení glukózy nebo celkové bílkoviny •mezi specifické markery patří elektroforetické stanovení beta 2 transferinu = asialotransferinu = „τ-transferinu“ •Alternativně lze použít kvantitativní stanovení „beta-trace proteinu“ v sekretu a séru (BTP >1,3 mg/L nebo poměr koncentrací v sekretu a séru >2 svědčí pro přítomnost likvoru ve vyšetřovaném vzorku) • HYDRAGEL 6 β2 TRANSFERRIN (SEBIA) •Princip: elektroforéza s následnou imunofixací s ANTI-Transferin –PER §množství vzorku: 10 µl bez předchozí úpravy, zároveň analýza séra pacienta (kontaminace příměsí krve) §stabilita: při 2 až 8 °C 1 týden §doba analýzy: 2,5 hod. §mez detekce: 80-100 µg/l §vyhodnocení: •kvalitativní, kvantitativní • Kvantitativní hodnocení 2-sialo 0-sialo Hodnocení poměr vzorek sekretu vzorek séra hodnocení asialo/disialo -transferin > 1 analýza není požadována pozitivní asialo/disialo -transferin ≤ 1 poměr asialo/disialo –transferin ze séra ≥ poměr asialo/disialo –transferin ze vzorku sekretu negativní (znečištění plazmou) poměr asialo/disialo –transferin ze séra < poměr asialo/disialo –transferin ze vzorku sekretu pozitivní (část asialo –transferinu pochází z CSF 2-sialo = 3,6 % 0-sialo = 10,5% R = 0-sialo/2-sialo = 2,9 Vzorek č.1 – sekret z ucha 2-sialo 0-sialo Poměr 0-sialo/ 2-sialo TRF v sekretu > 1- pozitivní 1 2 3 4 5 6 1- neg. kontrola – sérum 75x řeď. 2 - poz. kontrola – likvor 3 - sérum pacienta: 10 řeď. 4 - sekret pacienta: neř. 5 - sekret pacienta: řeď.1:1 6 - sekret pacienta: řeď. 1:2 4 Vertikální fotometrie - uspořádání absorpční fotometrie, při které paprsek prochází kyvetou vertikálně Reflexní fotometrie •měří záření odražené od homogenně zbarvené podložky •Matrice: impregnovaná vlákna nebo vícevrstvý (želatinový) film •Vzorek: plná krev, sérum, plazma, moč •Suchá činidla aktivovaná vodou obsaženou ve vzorku •Použití zejména v glukometrech •Děkuji za pozornost