Cvičení z Analytické chemie 1 Analytická chemie kvalitativní Jiří Pazourek, Iva Kapustíková, Klára Odehnalová Ústav chemických léčiv Farmaceutická fakulta MUNI Brno 1 Obsah SLOVO AUTORŮ ..................................................................................5 Základní operace při kvalitativní analýze, Laboratorní vybavení........6 LABORATORNÍ CVIČENÍ 1. DŮKAZY KATIONTŮ...................................8 Postup při kvalitativní analýze kationtů .........................................9 Skupinová činidla pro důkazy kationtů.........................................11 Kyselina chlorovodíková, 3% HCl ..............................................11 Kyselina sírová, 35% H2SO4 .......................................................11 Sulfan, nasycený roztok H2S (kyselé prostředí).........................11 Hydrogensulfid amonný, roztok sulfanu zneutralizovaný NH3 .12 Hydroxid sodný, 0,1M NaOH ....................................................12 Amoniak, HYDROXID AMONNÝ, 0,1M vodný NH3 ....................12 Jodid draselný, 0,1M KI.............................................................13 Octan sodný, 1M CH3COONa ....................................................13 Selektivní reakce kationtů ............................................................14 Důkazy NH4 + ..............................................................................15 Důkazy Li+ ..................................................................................15 Důkazy Na+ ................................................................................15 Důkazy K+ ...................................................................................15 Důkazy Mg2+ ..............................................................................16 Důkazy Ba2+ ...............................................................................16 Důkazy Ca2+ ...............................................................................16 Důkazy Ag+ ................................................................................16 Důkazy Pb2+ ...............................................................................17 Důkazy Hg2 2+ ..............................................................................17 Důkazy Hg2+ ...............................................................................17 Důkazy Hg2 2+ a Hg2+ ...................................................................18 Důkazy Cu2+ ...............................................................................18 Důkazy Cd2+ ...............................................................................18 Důkazy Bi3+ ................................................................................19 Důkazy Sb3+ ...............................................................................19 Důkazy Fe3+ ................................................................................19 Důkazy Al3+ ................................................................................20 2 Důkazy Cr3+ ................................................................................20 Důkazy Zn2+ ...............................................................................20 Důkazy Co2+ ...............................................................................21 Důkazy Ni2+ ................................................................................21 Důkazy Mn2+ ..............................................................................21 LABORATORNÍ CVIČENÍ 2. DŮKAZY ANIONTŮ ..................................22 Postup při kvalitativní analýze aniontů.........................................22 Odstranění kationtů (těžkých kovů) .............................................23 Skupinová činidla pro důkazy aniontů..........................................24 Reakce s chloridem barnatým (0,05 M BaCl2)...........................24 Reakce s dusičnanem stříbrným (0,1M AgNO3).......................24 Reakce s manganistanem draselným v silně kyselém prostředí, 0,002M KMnO4 .........................................................................25 Reakce s jódem, 0,01M I2..........................................................26 Reakce s jodidem draselným, 0,1M KI......................................26 Selektivní reakce aniontů .............................................................28 Důkazy SO4 2- ..............................................................................28 Důkazy SO3 2- ..............................................................................28 Důkazy S2O3 2- .............................................................................28 Důkazy CrO4 2a Cr2O7 2- ..............................................................29 Důkazy PO4 3- ..............................................................................29 Důkazy BO2 - ...............................................................................29 Důkazy CO3 2- ..............................................................................30 Důkazy Cl- ..................................................................................30 Důkazy Br- ..................................................................................31 Důkazy I- ....................................................................................31 Důkazy SCN- ...............................................................................32 Důkazy NO2 - ...............................................................................32 Důkazy NO3 - ...............................................................................33 LABORATORNÍ CVIČENÍ 3. KLASICKÁ ORGANICKÁ ANALÝZA ............34 Úvod..............................................................................................34 Důkazy prvků (kvalitativní elementální analýza) ..........................34 UHLÍK A VODÍK..........................................................................34 DUSÍK, SÍRA A HALOGENY.........................................................35 KYSLÍK........................................................................................36 3 DUSÍK 2 – DŮKAZ NATRONOVÝM VÁPNEM..............................37 HALOGENY 2 – BEILSTEINOVA ZKOUŠKA..................................37 ROZPUSTNOST..............................................................................38 Poznámky ke klasifikaci do skupin M, I, N ................................38 Důkazy funkčních skupin ..............................................................42 HALOGENY ................................................................................42 ALKOHOLY (skupina -OH na alifatickém řetězci).......................42 FENOLY (skupina -OH na aromatickém jádře) ..........................44 KARBONYLOVÉ SLOUČENINY (skupina -C=O, -COH) .................45 ALDEHYDY .................................................................................45 KARBOXYLOVÉ KYSELINY (skupina -COOH)...............................46 ESTERY (skupina -COOR, -COOAr).............................................47 ETHERY (R - O - R, R - O - Ar) .....................................................48 AMIDY (skupina -CONH2, -CONH-, -CON= )...............................49 AMINY (skupiny -NH2, -NH-, -N= ).............................................50 Důkaz primárních alifatických aminů........................................51 Důkaz primárních aromatických aminů ....................................52 Důkaz primárních aminů...........................................................52 Důkaz sekundárních alifatických aminů....................................52 Důkaz primárních a sekundárních aminů..................................53 Důkaz primárních a sekundárních aromatických aminů...........53 Důkaz terciárních aminů ...........................................................54 Nitro- a nitrososloučeniny (skupiny -NO2 a -NO)......................54 Nitrososloučeniny .....................................................................55 LABORATORNÍ CVIČENÍ 4. FYZIKÁLNÍ VLASTNOSTI LÁTEK................56 Stanovení fyzikálních vlastností organických sloučenin. Měření bodu tání, indexu lomu, pH, hodnocení rozpustnosti silice .........56 Teplota tání...............................................................................56 Index lomu ................................................................................57 Měření pH vodných roztoků .....................................................59 Identifikace opticky aktivní látky polarimetricky ......................62 LABORATORNÍ CVIČENÍ 5. FOTOMETRIE UV-VIS...............................66 Fotometrie ................................................................................66 Acidobazické indikátory............................................................68 4 Využití fotometrie ke kvalitativní analýze. charakteristiky a změny absorpčních spekter .....................................................................70 LABORATORNÍ CVIČENÍ 6. INFRAČERVENÁ SPEKTROMETRIE...........72 Úvod - Infračervená spektrometrie ..............................................72 Identifikace organických sloučenin infračervenou spektrometrií 78 Zjednodušená tabulka charakteristických vibrací.........................82 ZDROJE A DOPORUČENÁ LITERATURA..............................................84 5 SLOVO AUTORŮ Tato skripta jsou určena pro magisterský studijní program Farmacie vyučovaný na Farmaceutické fakultě VFU Brno. Koncepce první a druhé úlohy vycházela ze skript „Liška, Jampílek, Opatřilová, Návody do cvičení z analytické chemie, Kvalitativní anorganická analýza, VFU Brno 2008“, u třetí úlohy ze skript „Svobodová a kol., Návody do cvičení z analytické chemie pro posluchače farmacie - II., UK Praha 1987“. U poslední úlohy patří poděkování doc. Jampílkovi za úvodní text o infračervené spektrometrii. Chtěli bychom zdůraznit, že tato skripta v žádném případě nenahrazují učebnici analytické chemie, protože jsou především uzpůsobena časovým možnostem a potřebám laboratorní výuky; nejsou zde detailně popsány všechny chemické reakce, jež se probírají na přednáškách, reakce kationtů a aniontů, které se ve cvičení neprovádí, jsou taktéž z úsporných důvodů vypouštěny. Dále byly omezeny reakce, které jsou zdlouhavé nebo by vyžadovaly extrémní podmínky (zahřívání nad 100 °C, delší práci v digestoři), kdy analyty nebo činidla jsou toxická nebo nestabilní (sirouhlík, Sn4+ , soli arsenu, uranylu apod.). Skripta tedy obsahují pouze tu část látky, která je nezbytná pro smysluplné provedení laboratorních cvičení. Na druhé straně je zřejmé, že jsme se u úloh nemohli omezit pouze na výčet pracovních úkonů formou pracovního protokolu, protože při kvalitativní analýze vzorku je od studenta očekávána logická úvaha a následná vlastní dedukce správného postupu. Student by si měl uvědomit, že i nejjednodušší analytické důkazy jsou založeny na chemických reakcích, a proto je samozřejmé, že postupu chemické analýzy lze porozumět pouze se základními chemickými znalostmi o charakteristických reakcích, roztocích, acidobazických rovnováhách (pufrech) apod. Studentům FaF VFU Brno doporučujeme jako přípravu na cvičení i zkoušku materiály nacházející se v e-learningovém systému MOODLE, https://amos.vfu.cz/moodle/ v předmětu a „Analytická chemie I (cvičení)“, případně „Analytická chemie I“. V případě hledání úplnějších vysvětlení lze doporučit učebnici „Karlíček a kol., Analytická chemie pro farmaceuty, UK Praha 2005“. Autoři, srpen 2014 Text byl upraven u cvičení č.3 v části elementární analýzy, rozšířen o polarimetrii (cvičení č.4) a upraven v části IČ (cvičení č.6) kvůli změně instrumentace (nový ATR nástavec). Dále byly opraveny některé překlepy a reakce antimonitého kationtu. Po přechodu Farmaceutické fakulty na MUNI, jsou materiály aktualizovány na serveru https://moodlinka.ics.muni.cz/. J. Pazourek, září 2022 6 ZÁKLADNÍ OPERACE PŘI KVALITATIVNÍ ANALÝZE, LABORATORNÍ VYBAVENÍ Postupy v klasické kvalitativní analýze (důkazech prvků či chemických skupin) vychází z jednoduchých operací prováděných v chemické laboratoři s výbavou základních laboratorních pomůcek a nádobí. K úspěšnému provedení důkazu je proto nezbytné ovládat alespoň zahřívání laboratorním kahanem nebo na vodní lázni, filtraci apod. Možnosti provádění důkazových reakcí: zkumavka, kapkovací destička, hodinové sklíčko laboratorní ochranné brýle Laboratorní plynové kahany: Bunsenův, Tecluho A 7 Běžné laboratorní vybavení 1. Stojan 2. Byreta 3. Exsikátor 4. Chladič 5. Dělící (extrakční, vytřepávací) nálevka 6. Železný kruh 7. Erlenmeyerova baňka 8. Titrační baňka 9. Držák zkumavek 10. Lodička 11. Filtrační nálevka 12. Plynový kahan 13. Kádinka 14. Váženka 15. Třecí miska s třenkou 16. Azbestová síťka 17. Lihový kahan 18. Pipety 19. Odměrný válec 20. Stojan na zkumavky (www.ped.muni.cz/wchem/chemicke_didakticke_hry/pexeso-laboratorni%20pomucky.htm) 8 LABORATORNÍ CVIČENÍ 1. DŮKAZY KATIONTŮ Klasický postup důkazů kationtů je založen na tvorbě jejich charakteristických sraženin z roztoků (viz tabulka na str. 10). Důkaz kationtů se v laboratoři neprovádí kombinatoricky jako robot (s každým činidlem), nýbrž logickou dedukcí vycházející ze znalostí důkazových reakcí, což omezí počet prováděných reakcí a tím především čas. V minulosti se prováděly důkazové reakce kationtů pomocí přesně uspořádaného systému (podle Böttgera) založeného především na rozdílných vlastnostech sulfidů. Podle produktů charakteristických reakcí s činidly HCl, H2S, NH4HS, (NH4)2CO3 byly kationty rozděleny následovně: I. skupina nerozpustných chloridů II. skupina sulfidů srážejících se z kyselého prostředí III. skupina sulfidů a hydroxidů vylučujících se z amoniakálního prostředí IV. skupina nerozpustných uhličitanů V. skupina kationtů, které se nesrážejí žádným z předchozích činidel Tento systém vyžadoval poměrně velké množství vzorku, práce s plynným sulfanem byla nepohodlná a celá analýza časově náročná, proto se už nepoužívá v původní podobě, ale stále tvoří základ rozdělování kationtů a tzv. skupinových reakcí. Tato činidla dnes označujeme jako skupinová činidla: HCl, H2SO4, H2S, NH4HS. K nim se přidávají ještě další činidla s charakteristickými reakcemi: hydroxid sodný (roztok NaOH), čpavková voda (hydroxid amonný), jodid draselný a roztok octanu sodného (zkouška hydrolýzy), příp. kyselina šťavelová a uhličitan amonný. V současné kvalitativní analýze se pro konečný důkaz iontu ještě používají činidla selektivní (specifická), kdy charakteristickou reakci vykazuje nejlépe pouze daný iont (příp. velmi omezený počet iontů), pak mluvíme o specifické reakci (činidlu). Skupinové reakce slouží hlavně jako základní orientační reakce, jejichž pozitivní výsledek určuje, které ionty mohou být v roztoku přítomny; negativní skupinová reakce ukazuje, které ionty v roztoku být nemohou. Provedením většího počtu skupinových reakcí a jejich správným vyhodnocením nakonec dospějeme k omezenému počtu iontů, které mohou být v roztoku přítomny. Jejich konečnou identifikaci provedeme selektivními (specifickými) reakcemi. 9 POSTUP PŘI KVALITATIVNÍ ANALÝZE KATIONTŮ Obvyklý postup při důkazu kationtů: 1/ Zjištění pH roztoku univerzálním indikátorovým papírkem 2/ Důkaz přítomnosti iontů NH4 + (NH4 + ruší některé důkazy) 3/ Skupinová reakce v kapce původního roztoku s HCl: a) pozitivní reakce (vzniká sraženina): 0,5 ml vzorku ve zkumavce vysrážíme přidáním 3% HCI, dále postupujeme podle bodu 4/. Odfiltrujeme sraženinu chloridů. Srážení bylo kvantitativní, jestliže přídavkem HCl k filtrátu se již sraženina netvoří b) negativní reakce (sraženina se nevytvořila) - dále podle bodu 4/ 4/ Skupinová reakce s H2SO4: a) je-li reakce pozitivní: 0,5 ml původního vzorku, resp. ve filtrátu po oddělení chloridů vysrážíme 35% H2SO4, povaříme a po vychladnutí odfiltrujeme sraženinu nerozpustných síranů. Filtrát analyzujeme podle bodu 5/ b) negativní reakce: bez oddělování postupujeme podle bodu 5/ 5/ Skupinové reakce s dalšími skupinovými činidly 6/ Podle výsledků bodu 5/ odstraníme v části původního vzorku kationty těžkých kovů a můžeme provést důkaz Mg2+ , Na+ , K+ a Li+ 7/ Selektivní důkazy kationtů 8/ Ověření výsledků, zejména nejednoznačných Ionty Na+ , K+ , NH4 + a Mg2+ se nesrážejí skupinovými činidly (sraženinu s alkalickým hydroxidem vytvoří Mg2+ pouze za nepřítomnosti NH4 + ). 10 Tabulka charakteristických reakcí vybraných kationtů Ion/činidlo HCl H2SO4 H2S NH4HS NaOH NH4OH KI octan Ag+ ++ ++ ++ ++  ++ Hg2 2+ ++ ++ ++ ++ ++  ++ Pb2+ + ++ ++ ++  ++  Ca2+ + + Sr2+ + Ba2+ ++ Hg2+ ++ ++ ++ ++  Cu2+ ++ ++ ++  ++ I2 Cd2+ ++ ++ ++  Bi3+ ++ ++ ++ ++  ++ Sb3+ ++   ++ + ++ Sn2+ ++ ++  ++ + Fe3+  + S! ++ ++ ++ + I2!  Fe2+ ++ ++ ++ Cr3+ ++  ++  Al3+ ++  ++ Co2+ ++ ++  Ni2+ ++ ++  Mn2+ ++ ++  Zn2+ + ++   Mg2+ ++ + ++ srážení je dokonalé (vzniká světle modrá sraženina) + srážení je jen neúplné nebo pozorovatelné při vysoké koncentraci dokazovaného iontu černá sraženina je v nadbytku činidla rozpustná na žlutý roztok  zelený roztok  11 SKUPINOVÁ ČINIDLA PRO DŮKAZY KATIONTŮ KYSELINA CHLOROVODÍKOVÁ, 3% HCl se srážejí za vzniku bílých sraženin AgCl, Hg2Cl2, resp. PbCl2 nerozpustných ve zředěných kyselinách. AgCl na světle postupně šedne vyredukovaným stříbrem Ag0 a za přítomnosti některých komplexotvorných činidel, např. ve 2M amoniaku, se rozpouští (na rozdíl od Hg2Cl2 a PbCl2) ─ vytváří chlorid diamminstříbrný, který se okyselením (15% HNO3) rozkládá zpět na AgCl: AgCl + 2 NH3 → [Ag(NH3)2]+ + Cl- [Ag(NH3)2]+ + 2 H+ + Cl→ AgCl + 2 NH4 + Hg2Cl2 se působením amoniaku rozkládá a disproporcionační reakcí vznikající elementární rtuť zabarvuje sraženinu amid-chloridu rtuťnatého černě: Hg2Cl2 + 2 NH3 → Hg0 + [Hg(NH2)]Cl + NH4 + + ClPbCl2 se v důsledku relativně vyšší rozpustnosti nesráží kvantitativně a na rozdíl od AgCl a Hg2Cl2 se dobře rozpouští v horké vodě. KYSELINA SÍROVÁ, 35% H2SO4 se srážejí ve formě bílých síranů, z nichž nejméně rozpustný je BaSO4 a nejvíce rozpustný CaSO4, který se proto sráží jen z koncentrovanějších roztoků. Ca2+ se může alternativně dokázat reakcí s kyselinou šťavelovou, se kterou tvoří bílou krystalickou sraženinu šťavelanu vápenatého. PbSO4 na rozdíl od ostatních nerozpustných síranů po přidání roztoku NH4HS zčerná v důsledku konverze na PbS. SULFAN, NASYCENÝ ROZTOK H2S (KYSELÉ PROSTŘEDÍ) poskytují nerozpustné sulfidy různých barev (viz tabulka), obvykle černé. Pozor! Sulfan má redukční účinky a případná sraženina se může zaměnit za bílý zákal elementární síry. Postup: Vzorek na kapkovací destičce nejprve okyselíme kapkou 3% HCl a pak přidáme několik kapek činidla. Pozorujeme vznik sraženiny. Ag+ Hg2 2+ Pb2+ Ba2+ Pb2+ Ca2+ ( Sr2+ Hg2 2+ Ag+ ) Ag+ Pb2+ Hg2 2+ Hg2+ Cu2+ Cd2+ Bi3+ Sb3+ ( Sn2+ Sn4+ ) 12 HYDROGENSULFID AMONNÝ, ROZTOK SULFANU ZNEUTRALIZOVANÝ NH3 Reagují tedy prakticky všechny kovové kationty kromě kationtů alkalických kovů, kovů alkalických zemin a Mg2+ . Tvoří se především černé sulfidy, ale hydrolyzující kationty tvoří hydroxidy (Cr3+ , Al3+ ). Sb2S3, SnS2 se v nadbytku činidla rozpustí za vzniku thiokomplexů. CoS a NiS polymerizují a nedají se ani kyselinami rozpustit. HYDROXID SODNÝ, 0,1M NaOH Jak je vidět, hydroxid sodný sráží skoro všechny kationty kovů, s výjimkou iontů kovů alkalických zemin a Ba2+ ; Mg2+ se sráží v silně alkalickém prostředí, ale bez přítomnosti amonného kationtu. Sraženiny jsou hydroxidy, oxidy (hnědý Ag2O, žlutý HgO) nebo zásadité soli (oxidosoli). Některé sraženiny mění barvu: Hg2(OH)2 se barví černě dismutací na elementární rtuť Hg0 , bílý Mn(OH)2 se oxiduje až na černý MnO2, Fe(OH)2 rezaví na klkovitý Fe(OH)3, růžový Co(OH)2 na hnědý Co(OH)3. Je obvyklé, že sražené hydroxidy se dají rozpustit v kyselině (=neutralizace). Avšak některé hydroxidy se mohou rozpustit i v nadbytku činidla (2M NaOH) na soli; jsou to amfoterní hydroxidy těchto kationtů: Vzniklé roztoky [M(OH)4](olovnatan, hlinitan, zinečnatan …) jsou bezbarvé s výjimkou chromitanů, které jsou zelené. Tato významná reakce se dá využít k oddělení těchto iontů ze směsi (odfiltrování sraženiny). AMONIAK, HYDROXID AMONNÝ, 0,1M VODNÝ NH3 Vodný roztok amoniaku je roztok hydroxidu amonného, takže u většiny kationtů (mimo kationtů alkalických kovů a kovů alkalických zemin) dochází k obdobné reakci jako s hydroxidem sodným (tvorba nerozpustných hydroxidů): Fe2+ Fe3+ Co2+ Ni2+ Mn2+ Zn2+ (Al3+ Cr3+ ) Ag+ Pb2+ Hg2 2+ Hg2+ Cu2+ Cd2+ Bi3+ Sb3+ ( Sn2+ Sn4+ ) Ag+ Hg2 2+ Pb2+ Ca2+ Sr2+ Hg2+ Cu2+ Cd2+ Bi3+ Sb3+ Sn2+ Fe3+ Fe2+ Cr3+ Al3+ Co2+ Ni2+ Mn2+ Zn2+ Mg2+ Pb2+ Al3+ Zn2+ Sb3+ Sn2+ Cr3+ Pb2+ Bi3+ Sb3+ Sn2+ Fe3+ Fe2+ Cr3+ Al3+ Hg2+ Hg2 2+ 13 Výjimkou jsou ionty halogenidů rtuťných, které se srážejí jako bílé amidosoli Hg(NH3)Cl (při reakci se vytvoří elementární černá Hg0 ), a dále ty, které se rozpustí v nadbytku činidla (2M NH3) za tvorby rozpustných amminkomplexů: Komplexy [Ag(NH3)2]+ , [Cd(NH3)4]2+ , [Zn(NH3)6]2+ , [Mn(NH3)6]2+ jsou bezbarvé, [Cu(NH3)4]2+ je modrý, [Ni(NH3)6]2+ je světle modrý, [Co(NH3)6]3+ je žlutohnědý, protože vznikající růžový Co(OH)2 se v alkalickém prostředí postupně oxiduje vzdušným kyslíkem na Co(OH)3. Tyto významné komplexační reakce se dají využít jak přímo k identifikaci, tak i k oddělení těchto iontů ze směsi (odfiltrování sraženiny). JODID DRASELNÝ, 0,1M KI poskytují nerozpustné sraženiny jodidů, včetně následujících, které se ale v nadbytku (1M KI) rozpouští: Komplexy Pb2+ a Hg2+ jsou bezbarvé, komplex Hg2 2+ žlutý, ale vylučuje se černá elementární Hg0 . POZOR! Jodid má redukční vlastnosti, takže např. ionty Cu2+ jsou redukovány na Cu+ a vzniklá bílá sraženina Cul je zbarvena jódem hnědě. Obdobně se chovají ionty Fe3+ , dochází k redukci na Fe2+ , vzniká hnědý roztok jódu. Jód se dá dokázat zredukováním na jodid po přidání několika kapek roztoku siřičitanu, protože dojde k odbarvení reakční směsi: I2 + SO3 2+ H2O → 2 I+ SO4 2+ 2 H+ OCTAN SODNÝ, 1M CH3COONa tvoří sraženiny hydroxidů v důsledku HYDROLÝZY v mírně alkalickém pH, protože octan sodný je sůl slabé kyseliny a silné zásady. Kdybychom použili silně alkalické pH, zhydrolyzuje většina kovových kationtů (viz reakce NaOH); tyto čtyři kationty však hydrolyzují již v prostředí mírně alkalickém, někdy stačí i pouhé zředění kyselého roztoku vodou. Postup: K 0,5 ml vzorku přidáme pevný NaCl, případnou vzniklou sraženinu chloridů odfiltrujeme. K čirému filtrátu pak přidáme činidlo a pozorujeme, zda se tvoří sraženina. Pozn.: Cr3+ tvoří přechodně šedozelenou sraženinu, která se však rozpustí na modravě fialový roztok acetátokomplexů. Fe3+ tvoří slabě červené rozpustné acetátokomplexy. Ag+ Cd2+ Zn2+ Cu2+ Ni2+ Co2+ Mn2+ Ag+ Cu2+ Sb3+ Pb2+ Bi3+ Hg2+ Hg2 2+ Bi3+ Sb3+ ( Sn2+ Sn4+ ) 14 SELEKTIVNÍ REAKCE KATIONTŮ Odstraňování kationtů těžkých kovů Jako kationty těžkých kovů se formálně označují všechny kationty kromě iontů alkalických kovů a kovů alkalických zemin. Společnou vlastností těchto tzv. kationtů těžkých kovů je tvorba sraženin se skupinovými činidly (viz předchozí reakce), zvláště s hydrogensulfidem amonným – významně tak ruší důkazy iontů alkalických kovů a kovů alkalických zemin (Li+ , Na+ , K+ a Mg2+ ) se selektivními činidly. Proto před většinou selektivních reakcí je nutno tyto kationty těžkých kovů odstranit: Postup: k 1 ml vzorku přidáme 0,5 ml hydrogensulfidu amonného a 1 ml uhličitanu amonného, zfiltrujeme, filtrát okyselíme HCl a přítomné těkavé amonné soli necháme opatrně odpařit („odkuřování") na porcelánové misce do sucha a mírně vyžíháme. Odparek rozpustíme v čištěné vodě a ve výluhu dokazujeme výše zmíněné kationty. Pro selektivní reakce při důkazu kovů alkalických zemin (Ca2+ , Ba2+ ) je rovněž nutno těžké kovy odstranit: ve zkumavce k 1 ml vzorku přidáme 1 ml roztoku sulfidu amonného, sraženinu sulfidů odfiltrujeme. Filtrát neutralizujeme pomocí 50% kyseliny octové. Ve filtrátu jsou nyní pouze ionty alkalických kovů a kovů alkalických zemin. Důkazy v plameni Tyto zkoušky jsou jednoduché a citlivé a lze je použít k důkazům přímo ve vzorku bez úprav. Plamenovými zkouškami (nad plynovým kahanem) dokazujeme především alkalické kovy a kovy alkalických zemin: Na+ , Li+ , Ca2+ , Sr2+ , Ba2+ , Ca2+ . Platinový drátek s očkem zatavený ve skleněné tyčince očistíme opakovaným žíháním a nořením do kádinky s koncentrovanou kyselinou dusičnou tak, aby nebarvil svítivý plamen plynového kahanu. Pak na očko naneseme vzorek (nejlépe tuhý odparek příp. kapku roztoku). V případě pozitivní reakce pozorujeme v prvních vteřinách po vnesení do svítivé části plamene intenzivní barvu – od žluté až po zelenou. Pozn.: pracujeme v digestoři! 15 DŮKAZY NH4 + Tento kationt dokazujeme jako první přímo v původním vzorku. K 0,5 ml vzorku ve zkumavce přidáme 1 ml NaOH (2M) a lehce zahřejeme. Unikající plynný amoniak vytěsněný silnou zásadou dokážeme např.: 1/ navlhčený univerzální indikátorový papírek zmodrá; 2/ filtrační papír s kapkou roztoku soli Cu2+ zmodrá 3/ papírek s kapkou Nesslerova činidla (tetrajodortuťnatan draselný K2[HgI4] v prostředí KOH) zhnědne. 2 NH3 + [HgI4]2→ [Hg(NH2)I]  + 3 I+ NH4 + Pozn.: při vysokých koncentracích lze indikovat plynný amoniak i čichem DŮKAZY Li+ 1/ Li+ se dokáže nejsnadněji reakcí v plameni. Barví plamen karmínově červeně, zbarvení plamene se objevuje hned po vložení vzorku do plamene. DŮKAZY Na+ 1/ Sodné soli barví nesvítivý plamen intenzivně žlutě. Reakce je vysoce citlivá. DŮKAZY K+ 1/ Přítomnost těkavých draselných solí ve vzorku nejjednodušeji testujeme plamenovou zkouškou – v plameni se objeví světle fialové zabarvení. Žluté zbarvení sodíku se dá potlačit modrým kobaltovým sklem, přes které zbarvení plamene pozorujeme. 2/ K několika kapkám neutrálního roztoku vzorku přidáme na kapkovací desce sodnou sůl hexanitrodifenylaminu (dipikrylaminu). Vzniká oranžově červená sraženina. Ruší ionty NH4 + . 3/ S hexanitrokobaltitanem trisodným vzniká žlutá sraženina (nevzniká s Na+ ). Rušící ionty NH4 + nutno odstranit „odkouřením" s HCl. 16 DŮKAZY Mg2+ 1/ Ke kapce vzorku přidáme postupně kapku magnesonu (4-nitrobenzen-azo-resorcinol), 2 kapky 0,1M NaOH a porovnáme zbarvení. Hydroxid hořečnatý srážený v přítomnosti magnesonu tvoří chelát, který vytváří chrpově modře zbarvení povrchu sraženiny („lak"). Ruší amonné ionty. 2/ Pomocí zkumavkové reakce lze přítomnost Mg2+ dokázat jako bílou mikrokrystalickou sraženinu MgNH4PO4 v přítomnosti alkalických kovů: 0,5 ml vzorku, několik kapek 1M NH4Cl, 1M Na2HPO4 a po kapkách 2M NH3. Vyloučení sraženiny urychlíme třením stěn zkumavky skleněnou tyčinkou. DŮKAZY Ba2+ 1/ Těkavé soli barví plamen zeleně. 2/ Ke kapce vzorku přidáme 1 kapku 10% kyseliny octové a 2 kapky 10% K2CrO4. Vzniká žlutá sraženina chromanu barnatého (neruší Ca2+ ). 3/ Na filtrační papír dáme kapku vzorku a rhodizonanu sodného. Vznikne hnědá skvrna, která po pokápnutí 3% HCl zčervená. DŮKAZY Ca2+ 1/ Ionty Ca2+ barví plamen cihlově (oranžově) červeně. 2/ V slabě kyselém prostředí nadbytku kyseliny šťavelové vzniká bílá krystalická sraženina šťavelanu vápenatého. Provedeme na skleněné desce nebo hodinovém sklíčku: k 1 kapce vzorku přidáme 1 kapku kyseliny šťavelové. Ba2+ ani alkalické kovy reakci neruší. DŮKAZY Ag+ 1/ Ke kapce vzorku přidáme kapku roztoku Chelatonu III (komplexuje rušící kovové ionty = maskování), kapku 2M NH3 a kapku 1M KI. 17 Za těchto reakčních podmínek je žlutá sraženina Agl specifickým důkazem iontů stříbra. 2/ K 1 kapce 10% K2CrO4 přidáme na filtračním papíře 1 kapku vzorku a vysušíme. Střed skvrny pokápneme 2M NH3, dále několika kapkami 50% kyseliny octové. Vzniklý červený prstenec Ag2CrO4 je důkazem přítomnosti Ag+ . DŮKAZY Pb2+ 1/ Na filtrační papír dáme 1 kapku vzorku, 1 kapku 35% H2SO4. Vzniklou bílou sraženinu PbSO4 promyjeme vodou - do středu skvrny pipetou opatrně přidáváme po kapkách čištěnou vodu. Kapkou sulfidu amonného sraženina zčerná (konverze na PbS). 2/ Zkumavková reakce: k 0,5 ml vzorku se přidá několik kapek 1M KI. Žlutá sraženina Pbl2 se zahřátím rozpustí (např. zkumavku umístíme do proudu horké vodovodní vody), ochlazením se vyloučí žluté šupinky („zlatý déšť'). 3/ S roztokem 10% chromanu draselného vzniká žlutá sraženina PbCrO4, rozpouští se v HNO3 i NaOH. DŮKAZY Hg2 2+ 1/ Na filtrační papír dáme kapku nasyceného roztoku NaNO2 a tři kapky 0,1M stříbrné soli (AgNO3). Po vsáknutí kápneme 1 kapku vzorku. Málo rozpustný dusitan stříbrný AgNO2 způsobí redukci rtuťných solí za vzniku černé elementární rtuti Hg0 . 2/ Charakteristické pro rtuťné soli je dismutace rtuťných iontů v alkalickém prostředí na ionty Hg2+ a Hg° (viz skupinové reakce HCl). DŮKAZY Hg2+ 1/ Na filtrační papír postupně naneseme kapku 1M KI, 20% siřičitan sodný, 10% CuSO4, 3% HCl a nakonec kapku vzorku. Oranžově červená skvrna tetrajodortuťnatanu měďného je důkazem přítomnosti Hg2+ . 18 DŮKAZY Hg2 2+ a Hg2+ 1/ Hliníkový plíšek (alobal) odmastíme a pokápneme vzorkem. Po chvíli se začne tvořit katalytickým působením iontů Hg2 2+ nebo Hg2+ šedobílý povlak Al2O3 . x H2O. 2/ Na filtrační papír kápneme kapku vzorku, kapku 5% SnCl2 a kapku čerstvě předestilovaného anilinu (vytvoří se vhodné pH, Sb3+ neruší). Tmavá skvrna vyredukované rtuti je důkazem jak Hg2 2+ tak i Hg2+ . 3/ Kationty rtuti obou oxidačních stupňů také dokážeme roztokem 1% roztokem difenyl-karbazidu, vznikne modrofialové zbarvení. DŮKAZY Cu2+ Měďnaté roztoky jsou v důsledku hydratace modré, modrozelené nebo zelené. Bezvodé soli jsou bílé. 1/ Plamenová zkouška způsobí zelené zabarvení plamene (zbarvení pochází z těkavé soli měďnaté, např. CuCl2). 2/ Na filtrační papír kápneme 1 kapku vzorku a 10% HCl, poté kapku 10% hexakyanoželeznatanu draselného K4[Fe(CN)6]. Vznikne hnědá sraženina (Hatchettova hněď). 3/ Na filtrační papír kápneme postupně kapku vzorku, 10% vínanu sodno-draselného (maskuje jiné kationty), benzoinoxim (Kupron) a papírek umístíme nad páry amoniaku. Zelená skvrna je specifickým důkazem Cu2+ . DŮKAZY Cd2+ 1/ Ke kapce vzorku přidáme 1–2 kapky 10% HCl a roztok sulfanu. Vzniká žlutá sraženina CdS. Někdy je potřeba při této reakci provést stínění rušících iontů (např. Cu2+ , Co2+ , Ni2+ ). 2/ Na filtrační papír dáme kapku vzorku, kapku 10% HCl, kapku roztoku Cadionu S a 2 kapky 2M NaOH. Fialové zabarvení skvrny hydroxidu kademnatého přejde na růžové. 19 DŮKAZY Bi3+ Soli Bi3+ jsou bezbarvé. Ve vodě se rozpouštějí chloridy, sírany, dusičnany. Snadno dochází k hydrolýze za vzniku bílých nerozpustných oxidosolí. Hydrolýzu lze potlačit přidáním kyselin o stejném aniontu (nutno udržovat pH < 2). 1/ Na filtračním papíře pokápneme vzorkem krystalek thiomočoviny; vznikne žlutě zbarvená komplexní sloučenina. 2/ Na filtračním papíře ke kapce vzorku přidáme kapku bismutiolu. Vznikne jasně červený nerozpustný komplex. DŮKAZY Sb3+ Kationty antimonité hydrolyzují podobně jako Bi3+ . 1/ Krystalek thiomočoviny na filtračním papíře pokápneme vzorkem; vznikne žluté zbarvení (méně výrazné než u Bi3+ ). 2/ Do zkumavky s několika kapkami vzorku přidáme 1 ml sulfidu amonného. Sraženinu odfiltrujeme a ve filtrátu (obsahuje thioantimonitan) okyselíme 10% HCl. Vyloučí se oranžová sraženina Sb2S3. 3/ Na hodinovém sklíčku (nebo ve zkumavce) pokropíme krystalek thiosíranu sodného Na2S2O3 několika kapkami 10% Na2CO3 a dvěma kapkami vzorku. Po opatrném zahřátí se vytvoří červená sraženina antimonové rumělky (Sb2S3 + Sb2O3). DŮKAZY Fe3+ Ačkoli Fe3+ je bezbarvý, roztoky železitých solí jsou žlutohnědě zbarveny postupným vznikem Fe(OH)3 (hydroxo-komplexy). 1/ Jednu kapku hexakyanoželeznatanu draselného K4[Fe(CN)6] kápneme na filtrační papír a poté kapku vzorku. Vznikne tmavomodrý komplex berlínské modři KFeIII [FeII (CN)6]. 2/ Na filtrační papír ke kapce vzorku přidáme kapku thiokyanatanu amonného; vznikne charakteristický krvavě červený rozpustný komplex. 3/ Na filtračním papíře ke kapce vzorku přidáme kapku 5% kyseliny sulfosalicylové. Za přítomnosti Fe3+ se vytvoří rozpustný fialový komplex. 20 DŮKAZY Al3+ 1/ Zkumavková reakce: k 0,5 ml vzorku přidáme 2 kapky roztoku alizarinu S a okyselujeme 10% HCl, až přejde červené zbarvení do žlutého. Po kapkách opatrně přidáváme 2M NH3. Za přítomnosti kationtů Al3+ se vyloučí sraženina AI(OH)3 na povrchu červeně vybarvená („lak"). Provádíme současně srovnávací reakci (slepý vzorek bez přítomnosti kationtů Al3+ ). 2/ Kápneme 2–3 kapky morinu (derivát flavonu) na filtrační papír a vysušíme. Přidáme kapku vzorku a okyselíme 3% HCl. Jako důkaz přítomnosti Al3+ se projeví v UV světle intenzivní zelená fluorescence. Rovněž je třeba provést reakci se slepým vzorkem. DŮKAZY Cr3+ Hydratované ionty Cr3+ jsou intenzivně fialové, ve formě komplexů (sírany, chloridy) mají zabarvení zelené. Chromité kationty dokazujeme selektivními reakcemi po jejich oxidaci v prostředí alkalických hydroxidů jako CrO4 2- . Provedení: Ve zkumavce k 1 ml vzorku přidáme 2 ml 2M NaOH, 1 ml 3% H2O2 a směs povaříme. Vzniklé hydroxidy odfiltrujeme a čirý filtrát je za přítomnosti aniontů CrO4 2žlutě zabarven (lze jej použít současně k selektivním důkazům Al3+ a Zn2+ ). 1/ K 0,5 ml ochlazeného filtrátu přidáme několik kapek 3% H2O2, okyselíme 35% H2SO4 a ihned přidáme 0,5 ml amylalkoholu. Jsou-li přítomny ionty CrO4 2, alkoholická vrstva se zbarví modře. Takto provedená analytická reakce je specifická. 2/ Na kapkovací desce okyselíme kapku filtrátu zředěnou 3% HCl a po přidání kapky 1% difenyl-karbazidu vznikne fialově červené zabarvení. DŮKAZY Zn2+ 1/ Ke kapce vzorku na kapkovací desce přidáme kapku 3% HCl a kapku 10% hexakyanoželeznatanu draselného. Vytvoří se bílá sraženina hexakyanoželeznatanu zinečnatého Zn2[Fe(CN)6]. Pozor! Přítomné stopy iontů železa obvykle zabarví tuto bílou sraženinu do modra (viz berlínská modř KFe[Fe(CN)6]) 2/ Zkumavková reakce: k 0,5 ml vzorku přidáme NH4HS. Vzniká bílá sraženina ZnS, která je v minerálních kyselinách rozpustná. V případě použití filtrátu po oddělení amfoterních hydroxidů neutralizujeme vzorek 50% kyselinou octovou. 21 DŮKAZY Co2+ Ve vodných roztocích jsou hydratované kobaltnaté ionty růžově zbarveny. Bezvodé soli jsou modré. 1/ Na filtrační papír dáme kapku vzorku a kapku konc. HCl. Skvrnu opatrně nad plamenem vysušíme, projeví se modré zbarvení komplexu Co[CoCl4]. 2/ Zkumavková reakce: k 0,5 ml vzorku přidáme 0,5 ml thiokyanatanu amonného a 1 ml amylalkoholu. Alkoholická vrstva se po vytřepání zbarví intenzivně modře komplexní sloučeninou (NH4)2[Co(SCN)4]. Reakci ruší přítomnost iontů Fe3+ (intenzivně červený roztok), které maskujeme pomocí NaF. DŮKAZY Ni2+ V hydratovaném stavu jsou Ni2+ ionty jasně zeleně zbarveny, bezvodé jsou bezbarvé. 1/ Na filtračním papíře pokápneme vzorkem krystalek thiomočoviny; vznikne žlutě zbarvená komplexní sloučenina. 2/ Na filtračním papíře přidáme ke kapce vzorku kapku Čugajevova činidla (2,3-butandiondioxim) a skvrnu okouříme nad amoniakem. Vznik červené sraženiny je specifickým důkazem. Ionty Fe2+ , Co2+ a Cu2+ tvoří rovněž barevné komplexy, ty jsou však rozpustné a můžeme je ze skvrny vymýt zředěným amoniakem. 3/ NH3 sráží světle zelenou sraženinu Ni(OH)2, ta se v nadbytku NH3 rozpustí na modrofialovou komplexní sloučeninu [Ni(NH3)6]2+ . DŮKAZY Mn2+ 1/ Na filtrační papír kápneme kapku vzorku a kapku 0,1M NaOH. Postupně vznikají různě zbarvené oxidační produkty způsobené oxidací vzdušným kyslíkem. 2/ Zkumavková reakce: k 0,5 ml vzorku přidáme několik kapek 15% HNO3 a asi 0,5 g pevného peroxodisíranu draselného K2S2O8 a 3 kapky 0,1M AgNO3. Směs lehce povaříme, po usazení sraženiny pozorujeme fialově zbarvený roztok manganistanu. Oxidace je katalyzována Ag+ ionty a reakce je pro důkaz Mn2+ specifická. 22 LABORATORNÍ CVIČENÍ 2. DŮKAZY ANIONTŮ POSTUP PŘI KVALITATIVNÍ ANALÝZE ANIONTŮ Obsah kationtů ve vzorku je již známý a díky znalosti jejich charakteristických reakcí můžeme přítomnost některých aniontů vyloučit. Víme-li, že ve vzorku jsme již dokázali Ag+ , pak můžeme samozřejmě vyloučit přítomnost aniontů halogenů. Obdobně za přítomnosti kationtů a aniontů s redukčními vlastnostmi nemohou současně být ve vzorku anionty, které mají vlastnosti oxidační. Pomocí univerzálního indikátorového papírku zjišťujeme pH vodného roztoku. Je-li reakce kyselá, může vzorek obsahovat volnou kyselinu nebo sůl silné kyseliny a slabé zásady; při alkalické reakci je přítomna silná zásada nebo sůl silné zásady a slabé kyseliny; při neutrální reakci lze předpokládat přítomnost soli silné kyseliny a silné zásady, které nehydrolyzují. Pro správné vyhodnocení skupinových srážecích reakcí aniontů je třeba zajistit neutrální prostředí! Neobsahuje-li vzorek barevné kationty kovů, lze podle zabarvení vodného roztoku předpokládat přítomnost iontů CrO4 2(žluté zbarvení), Cr2O7 2(oranžové zbarvení), [Fe(CN)6]4(žluté zbarvení), [Fe(CN)6]3(žlutozelené zbarvení), MnO4 (fialové zbarvení). Skupinové a selektivní reakce Obdobně jako při důkazu kationtů používáme skupinové a selektivní reakce. Jako reakce skupinové využíváme analytické srážecí a redoxní reakce. Na základě jejich výsledků vymezíme skupinu aniontů, které následně dokážeme selektivními reakcemi. Skupinové reakce srážecí jsou založeny na tvorbě barnatých a stříbrných solí, u kterých posuzujeme jejich rozpustnost ve vodě (pracujeme s vodnými roztoky!) a stálost jejich sraženin v kyselém prostředí. Tato sledování mají orientační charakter, rozdílnost rozpustností je relativní, je ovlivněna iontovou silou roztoku, poměrem koncentrací vzorku a činidla. Skupinové reakce redoxní nám dají informaci o zastoupení aniontů s redukčními vlastnostmi (roztoky KMnO4 a I2 se odbarví) a vlastnostmi oxidačními (KI se oxiduje na jód, který roztok barví). 23 ODSTRANĚNÍ KATIONTŮ (TĚŽKÝCH KOVŮ) Před důkazy aniontů skupinovými reakcemi a pro většinu selektivních reakcí je nutno odstranit kationty těžkých kovů (kovy alkalické neruší). Vysrážíme je pomocí Na2CO3, vznikají nerozpustné uhličitany, anionty zůstanou v roztoku jako sodné soli, které reakce neruší: M2+ + Na2CO3 → MCO3 + 2 Na+ Provedení: K části roztoku vzorku na porcelánové misce přidáváme roztok uhličitanu sodného (sledujeme přibývání sraženiny a okamžik, kdy roztok začne reagovat alkalicky). Povaříme 5 minut, sraženinu odfiltrujeme a malým objemem vody promyjeme. Filtrát opatrně neutralizujeme 15% HNO3. Při výše uvedeném postupu odstraňování kationtů těžkých kovů do vzorku zavedeme uhličitany, které proto musíme předem dokázat v původním vzorku. Totéž se týká dusičnanů, fosforečnanů a síranů, které se mohou adsorbovat na povrchu sraženiny uhličitanů. Je třeba si uvědomit, že při odstraňování kationtů těžkých kovů může také dojít k chemické změně (siřičitany, sulfidy, dusitany a arseničnany v alkalickém prostředí během zahřívání podléhají oxidaci). V kyselém prostředí (zjišťujeme pH vzorku!) se nemohou vyskytovat anionty kyselin, které se snadno rozkládají nebo jsou těkavé (uhličitany, dusitany, siřičitany, thiosírany, sulfidy, kyanidy). To může nastat také při neutralizaci kyselinou dusičnou. 24 SKUPINOVÁ ČINIDLA PRO DŮKAZY ANIONTŮ REAKCE S CHLORIDEM BARNATÝM (0,05 M BaCl2) Chlorid barnatý z neutrálního prostředí sráží nerozpustné bílé barnaté soli (až na žlutý BaCrO4), které se vyznačují různou stálostí v kyselém prostředí. Podle rozpustnosti v kyselinách můžeme barnaté soli rozdělit do 3 skupin: 1. Nerozpustné i v silně kyselém prostředí: 2. Rozpustné v silně kyselém (3% HCl), nerozpustné ve slabě kyselém prostředí (10% kyselina octová): 3. Rozpustné i ve slabě kyselém prostředí (10% kyselina octová), tj. nerozpustné jen v neutrálním prostředí: *Boritan jako sůl velmi slabé kyseliny vytvoří sraženinu po přidání kapky 0,1M NH3. Provedení: Do 3 jamek kapkovací desky dáme kapku neutrálního vzorku, kapku činidla a pozorujeme tvorbu sraženiny proti tmavému pozadí. Vytvoříli se sraženina, zkoušíme její rozpustnost přidáním několika kapek 10% kyseliny octové a 3% HCl do druhé a třetí jamky. REAKCE S DUSIČNANEM STŘÍBRNÝM (0,1M AgNO3) Podle rozpustnosti vznikajících sraženin můžeme stříbrné soli rozdělit do 4 skupin: 1. nerozpustné v 15% HNO3: SO4 2- IO3 - CrO4 2- SO3 2- S2O3 2- PO4 3- CO3 2- *BO2 - 25 2. rozpustné v HNO3, stálé jen v neutrálním prostředí: 3. rozpustné v 25% amoniaku, nerozpustné ve 0,1M amoniaku: 4. nerozpustné v 25% amoniaku: Provedení: do 3 jamek kapkovací desky dáme po kapce neutrálního vzorku a činidla. Při tvorbě sraženiny zkoušíme její rozpustnost několika kapkami 15% HNO3 a v několika kapkách 0,1M amoniaku. Sraženiny stříbrných solí na světle zvolna fialoví nebo šednou (tvorba Ag0 ). REAKCE S MANGANISTANEM DRASELNÝM V SILNĚ KYSELÉM PROSTŘEDÍ, 0,002M KMnO4 Manganistan je silné oxidační činidlo, odbarvuje se do hnědého odstínu (redukce na Mn4+ příp. až na Mn2+ ); pozitivně reagují oxidovatelné anionty: Provedení: Na kapkovací desku dáme 2 - 3 kapky vzorku, okyselíme kapkou 35% H2SO4. Po kapkách přidáváme činidlo a proti bílému pozadí pozorujeme odbarvování fialového roztoku činidla. Cl(bílá sraženina) Br (světle žlutá) I(žlutá) SCN- (bílá) SO3 2(bílá) S2O3 2(bílá, postupně tmavne) PO4 3- (žlutá) AsO4 3(hnědá) CrO4 2(červenohnědá) CO3 2(světle žlutá) BO2 (bílá, z konc. roz.) NO2 (bílá, z konc. roz.) Br(světle žlutá) SCN- (bílá) I- (žlutá) SO3 2- S2O3 2- Br- I- S2- SCN- CN- NO2 - 26 REAKCE S JÓDEM, 0,01M I2 Jód je na rozdíl od KMnO4 jen mírné oxidační činidlo; tuto reakci provádíme jen v případě pozitivní reakce s KMnO4. Provedení: ke 2 - 3 kapkám neutrálního vzorku na kapkovací desce přidáme zrnko hydrogenuhličitanu sodného, kapku škrobového roztoku a několik kapek činidla. Nezůstane-li roztok ani po přidání činidla a promíchání trvale zbarven modře, mohou být přítomny redukující anionty: REAKCE S JODIDEM DRASELNÝM, 0,1M KI. Jedná se o redukční reakci (vznikají CrIII+ resp. NII+ ) za vzniku sytě modrého zbarvení komplexu jódu se škrobovým mazem: Provedení: Na kapkovací desku dáme kapku činidla, kapku škrobového roztoku, kapku 3% HCl. Potom k roztoku přidáme kapku vzorku. 2 I+ 2 NO2 + 4 H+ → 2 NO + I2 + 2 H2O SO3 2- S2O3 2- CN- (SCNz konc. rozt.) CrO4 2- NO2 - 27 Tabulka charakteristických reakcí vybraných aniontů ++ srážení je dokonalé + srážení je neúplné nebo pozorovatelné pouze při vysoké koncentraci dokazovaného iontu  vzniklá sraženina je v nadbytku činidla rozpustná ** pozitivní průběh důkazové reakce * pozitivní průběh důkazové reakce pouze při vysoké koncentraci dokazovaného iontu BaCl2 AgNO3 KMnO4 I2 KI CH3COOH HCl HNO3 2M NH3 25% NH3 H+ H+ SO4 2++ ++ ++ + SO3 2++ ++ ++  ** ** S2O3 2+ + ++  ** ** PO4 3++ ++  BO2 + +  CO3 2++ ++  Cl++ ++  * Br++ ++ ++  ** I++ ++ ++ ++ ** SCN++ ++ ++  ** * NO2 +  ** ** NO3 - 28 SELEKTIVNÍ REAKCE ANIONTŮ DŮKAZY SO4 2- 1/ Na skleněnou kapkovací desku nebo hodinové sklíčko (podložené tmavou podložkou) ke kapce vzorku přidáme kapku 10% HCl a 0,05M BaCl2. Vzniká bílá mikrokrystalická sraženina BaSO4. SO4 2+ BaCl2 → 2 Cl+ BaSO4  DŮKAZY SO3 2Ve vodě rozpustné siřičitany (alkalické a amonný) mají redukční vlastnosti, vzdušným kyslíkem se pomalu oxidují na sírany. 1/ Zkumavková reakce: k 0,5 ml vzorku přidáme 5 kapek 35% H2SO4 a zahřejeme. Vzniklá kyselina siřičitá se rozkládá a uniká SO2, který dokážeme pomocí papírku s čerstvě vysráženým Ni(OH)2. Proběhne indukovaná reakce, při níž se vytvoří černá skvrna Ni(OH)3. Reagenční papírek si připravíme tak, že na proužek filtračního papírku naneseme kapku 0,05M Ni(NO3)2, pak kapku 2M NaOH a vzniklou zelenomodrou skvrnu Ni(OH)2 promyjeme opatrně několika kapkami vody. Obdobně reagují také ionty S2O3 2- . SO3 2+ H2SO4 → SO2  + H2O + SO4 2- 2/ K několika kapkám neutrálního vzorku přidáváme 5mM roztok I2 pokud se odbarvuje. Univerzálním indikátorovým papírkem zjistíme, zda je vzniklý roztok kyselý - vzorek může obsahovat SO3 2- . SO3 2+ I2 + H2O → 2 I+ 2 H+ + SO4 2Pozn.: Thiosírany reagují stejně, ale roztok zůstává neutrální! 3/ Siřičitany svými redukčními vlastnostmi redukují trifenylmethanová barviva na bezbarvou formu. Takto reaguje Votočkovo činidlo (směs fuchsinu a malachitové zeleně), kdy k 1 kapce činidla přidáme 1 kapku neutrálního roztoku vzorku. DŮKAZY S2O3 2- 1/ Dokážeme obdobně jako pomocí důkazu 1/ u SO3 2; zde se navíc po okyselení roztok bíle zakalí vzniklou koloidní sírou. S2O3 2+ 2 H+ → SO2  + H2O + S 29 2/ Viz důkaz 2/ pro SO3 2; zde se na rozdíl od SO3 2v neutrálním prostředí působením I2 netvoří síran, ale bezbarvý tetrathionan: 2 S2O3 2+ I2 → 2 I+ S4O6 2- 3/ Na kapkovací desku dáme kapku 0,5% roztok azidu sodného, 5mM l2 a škrobového roztoku. Je-li přítomna sloučenina obsahující tzv. „sulfidickou síru" (podobně jako ji také mají ve své struktuře thiokyanatany SCN), dojde katalytickým účinkem této sloučeniny k rozkladu azidu („jod-azidová" reakce) 2 N3 + I2 → 3 N2 +2 IModrý roztok se odbarvuje a šumí unikajícím dusíkem. Reakce umožní rozlišení S2O3 2od síranů a siřičitanů. DŮKAZY CrO4 2a Cr2O7 2Žluté rozpustné chromany přecházejí působením kyselin na oranžové dichromany 2 CrO4 2+ 2 H+ → Cr2O7 2+ H2O S alkalickými hydroxidy dochází ke vzniku žlutých chromanů Cr2O7 2+ 2 OH→ 2 CrO4 2+ H2O 1/ Důkazy obou aniontů viz Důkazy Cr3+ str. 20. DŮKAZY PO4 3- 1/ Zkumavková reakce: 0,5 ml roztoku vzorku doplníme několika kapkami hořečnaté soluce (MgCl2 + NH4Cl + NH3). Sráží se bílá krystalická sraženina hexahydrátu fosforečnanu hořečnatoamonného NH4MgPO4 . 6H2O. Sraženinu odfiltrujeme a promyjeme H2O, kapkou AgNO3 se sraženina na filtru v přítomnosti iontů PO4 3zbarví žlutě. 2/ Zkumavková reakce: k 1 ml molybdenové soluce (NH4)2MoO4 + HNO3 přidáme 2 - 3 kapky vzorku. Po lehkém zahřátí vznikne žlutá sraženina molybdátofosforečnanu amonného (NH4)3[P(Mo3O10)4] . x H2O. DŮKAZY BO2 - 1/ Na porcelánové misce odpaříme 1 ml vzorku do sucha, necháme vychladnout, přidáme 5 ml ethanolu a opatrně po stěně misky přidáme několik kapek konc. H2SO4. Skleněnou tyčinkou směs 30 opatrně promícháme a zapálíme unikající těkavý ester kyseliny borité. Plamen je zabarven zeleně. 2/ Po ovlhčení kurkumového papírku roztokem vzorku jej pokápneme kapkou 3% HCl. Po vysušení se objeví světle červenohnědá skvrna, která pokápnutím 1M NaOH zezelená. 3/ Asi k 1 ml roztoku vzorku se přidá 1 kapka fenolftaleinu (vznikne světle malinové zbarvení). Po přidáním mannitolu dochází k odbarvení roztoku. Pokles pH je zapříčiněn tvorbou chelátů boritanů s mannitolem (1,2-polyol) (kondenzace) – vznikající středně silná kyselina neutralizuje zásaditý boritan B4O7 2+ mannitol (..OH-(CHCH3)2-OH…) → H+ + [ ]Poznámka: Vzorek nesmí být příliš alkalický (koncentrovaný). DŮKAZY CO3 2- 1/ Zkumavková reakce: k 0,5 ml vzorku přidáme několik kapek chromsírové směsi, roztok šumí unikajícím CO2. Kapka barytové vody Ba(OH)2 na skleněné tyčince u ústí zkumavky zbělá vytvořením BaCO3. Rušící anionty se oxidují na netěkavé produkty (např. SO4 2, NO3 apod.). Reakce je pro uhličitany selektivní. 2/ Rozlišení uhličitanů a hydrogenuhličitanů: 3 kapky roztoku HgCl2 přidáme na kapkovací desce k několika kapkám vzorku. Vzniká červenohnědá sraženina zásadité soli HgCO3 . 3 HgO. Za přítomnosti HCO3 vznikne jen bílý zákal. Vzorek nesmí obsahovat jiné anionty. DŮKAZY ClZ běžných chloridů jsou ve vodě nerozpustné AgCl, PbCl2 a Hg2Cl2 (viz reakce kationtů). 1/ Kapku vzorku okyselíme 15% HNO3, přidáme 0,1M AgNO3. Vzniklá bílá sraženina AgCl je dobře rozpustná ve zředěném amoniaku. 2/ Zkumavková reakce: 0,5 ml vzorku doplníme opatrně 15–20 kapkami koncentrované kyseliny sírové a malým množstvím MnO2. Směs zvolna zahříváme. U ústí zkumavky umístěný filtrační papírek s kapkou 2M NaOH a kapkou roztoku fenolu s anilinem se po chvíli zbarví modře. NH2 OH O N O Cl2 + indofenolát OH O B O OH OH 31 3/ Zkumavková reakce (specifická reakce): V porcelánovém kelímku přidáme k 0,5 ml vzorku po 3 kapkách nasyceného roztoku KMnO4 a 10% CuSO4, odpaříme do sucha. Odparek smícháme s malým množstvím dichromanu draselného a s 5 kapkami 96% H2SO4 a mírně zahřejeme. Vznikající dichlorid chromylu CrO2Cl2 ve formě hnědé páry zachytíme na filtračním papírku, který jsme ovlhčili 2M NaOH. CrO2Cl2 se rozloží na žlutý chroman, který dokážeme kapkou difenylkarbazidu (červenofialové zabarvení). DŮKAZY BrRozpustnost bromidů je obdobná jako rozpustnost chloridů. Bromidy podléhají oxidaci snadněji než chloridy. 1/ Zkumavková reakce: 0,5 ml vzorku okyselíme několika kapkami 96% H2SO4, doplníme 1 ml chloroformu a přidáváme po kapkách roztok chloraminu T, který uvolňuje elementární chlór, který oxiduje bromid. Protřepeme a sledujeme, zda se spodní vrstva nepolárního bezkyslíkatého rozpouštědla CHCl3 zabarví vznikajícím Br2 žlutě až hnědě. Cl2 + 2 Br→ Br2  + 2 Cl- 2/ Zkumavková reakce: 0,5 ml vzorku okyselíme 0,5 ml 96% H2SO4, přidáme 2 kapky nasyceného roztoku KMnO4. Po lehkém zahřátí unikající páry bromu zabarví filtrační papírek s kapkou fluoresceinu červeně (vzniká eosin). Obdobně reagují jodidy. DŮKAZY I- 1/ Na kapkovací desku po kapkách dáme vzorek, 50% kyselinu octovou, dusitan sodný a škrobový roztok. Vytvoří se modré zbarvení komplexy jódu se škrobovým indikátorem. Nedochází k oxidaci Clani Br- ; dusitany ve slabě kyselém prostředí selektivně oxidují jodidy na jód. 2 I+ 2 NO2 + 4 H+ → 2 NO + I2 + 2 H2O 2/ Hg2+ sráží červený Hgl2, v přebytku Ise však vytvoří bezbarvý roztok K2[HgI4]. SO2 NCl SO2 NH2 H+ + Cl2 chloramin 32 3/ Oxidace chloraminem T jako u Br. Vyloučí se I2, který zbarví vrstvu chloroformu fialově. Jsou-li přítomny současně ionty Bra I- vedle sebe, pak malým přídavkem chloraminu T se projeví fialové zbarvení, nadbytkem tohoto oxidačního činidla je jód oxidován na jodičnan a objeví se hnědožluté zbarvení Br2. DŮKAZY SCN- 1/ Kapka vzorku okyselená kapkou 3% HCl po přidání FeCl3 se krvavě zbarví rhodanoželezitanem (thiokyanoželezitý komplex) SCN+ Fe3+ → [Fe(SCN)]2+ 2/ Jod-azidová reakce „sulfidické síry“: na kapkovací desku dáme 1 kapku 0,5% azidu sodného, 0,01M I2 a škrobového roztoku. Za přítomnosti katalyzujícího SCNse modrý roztok odbarví a unikají bublinky N2 – jde o rozklad azidu („jod-azidová" reakce) 2 N3 + I2 → 3 N2 +2 IModrý roztok se odbarvuje a šumí unikajícím dusíkem (viz také thiosírany). DŮKAZY NO2 - 1/ Na kapkovací desku postupně naneseme kapku 0,1M KI, 10% CH3COOH a kapku škrobového roztoku. Přidáním vzorku ihned vznikne modré zbarvení (srovnejte důkaz I- ). 2/ K jedné kapce vzorku přidáme kapku 10% kyseliny octové, dále kyseliny sulfanilové a po chvíli kapku 1% roztoku 1-naftolu v 2M NaOH. Jsou-li přítomny ionty NO2 , vznikne červený roztok azobarviva (proběhla diazotace a kopulace). Reakce je specifická, ale má probíhat za nízké teploty (chlazení ledem). + NH2 N N N N HO HO OHHNO2 SO2 NCl SO2 NH2 H+ + Cl2 chloramin 33 DŮKAZY NO3 - 1/ 5 kapek vzorku odpaříme v porcelánovém kelímku do sucha, necháme vychladnout, odparek pokapeme roztokem fenolsulfonové kyseliny. Směs promícháme tyčinkou a po chvíli opatrně naředíme vodou a zalkalizujeme amoniakem. Roztok je i ve stopách zbarven intenzivně žlutými nitrofenolsulfonáty. 2/ Nejsou-li ve vzorku současně přítomny dusitany, lze dusičnany dokázat po jejich redukci na dusitany (diazotační a kopulační reakce jako u důkazu NO2 ). Redukci dusičnanů provedeme tak, že k 0,5 ml vzorku přidáme několik kapek 50% kyseliny octové, trochu práškového Zn a protřepeme. Po chvíli zfiltrujeme a ve filtrátu dokazujeme dusitany. NO3 (Zn, 50% kys. octová) → NO2 Jsou-li ve vzorku přítomny dusitany, je nutno je předem odstranit: v 1 ml vzorku rozpustíme cca 0,5 g močoviny a přidáme kapku 35% H2SO4. Dusitany budou kvantitativně odstraněny, když vzorek nebude z roztoku jodidu draselného vylučovat jód. 3/ Důkaz redukcí na amoniak (Devardova reakce). Do zkumavky dáme 1 ml vzorku, špetku práškového hliníku a přelejeme 2 ml 2M NaOH. Na směs umístíme smotek buničiny/vaty tak, aby nenasál hydroxid. Na smotek opatrně vpravíme pH papírek smočený ve vodě, roztok zahřejeme, unikající amoniak zbarví žlutý indikátorový papírek zelenomodře. NO3 + 8 Al + 5 OH+ 18 H2O → 3 NH3 + 8 [Al(OH)4]POZOR – STEJNĚ REAGUJÍ DUSITANY A AMONNÉ IONTY! OHHSO3 NO3 - H+ OHHSO3 NO2 OHSO3 NO2 OH- 34 LABORATORNÍ CVIČENÍ 3. KLASICKÁ ORGANICKÁ ANALÝZA ÚVOD Zásadní rozdíl od předchozí „anorganické analýzy“ (úlohy 1 a 2) je v omezeném počtu prvků, ze kterých se skládají organické sloučeniny. Jsou to prakticky pouze C, H, O, N, S, halogeny (F, Cl, Br, I). Důkaz těchto prvků je důležitý, ale k celkové analýze nestačí – v důsledku existence mnoha izomerů je nutno ještě prokázat reaktivní (charakteristické) skupiny, které daná molekula nese (alkohol, ester, amin…). Proto organická analýza zahrnuje dva kroky: 1/ elementární (prvkovou) analýzu: rozklad/převod na anorganickou formu (mineralizace) a potom 2/ důkazy funkčních skupin. Jednoduchou doplňovací zkouškou je 3/ zařazení do třídy rozpustnosti. V tomto cvičení jsou procvičovány klasické chemické důkazy prvků a funkčních skupin organických látek (tzv. organická analýza), ve velké většině roztokové reakce. DŮKAZY PRVKŮ (KVALITATIVNÍ ELEMENTÁLNÍ ANALÝZA) K důkazu prvků v organických látkách se používá reakcí založených na oxidační nebo redukční mineralizaci, čímž se jednotlivé prvky převedou na ionty dokazatelné obvyklými reakcemi anorganické kvalitativní analýzy. Mezi základní důkazy patří především důkaz uhlíku, vodíku, dusíku, halogenů a síry. Univerzální důkaz kyslíku termickým rozkladem se pro složité uspořádání pokusu a zdlouhavost důkazu běžně neprovádí. UHLÍK A VODÍK Princip: žíháním s práškovým oxidem měďnatým (katalyzátor) se oxiduje organicky vázaný uhlík na CO2 a dokazuje se jako zákal uhličitanu barnatého jímáním do roztoku hydroxidu barnatého. Zároveň se oxiduje vodík na H2O. C + O2 → CO2 (+ Ba(OH)2 → BaCO3) 2 H + ½ O2 → H2O (kapky) Činidla: Oxid měďnatý, nasycený roztok hydroxidu barnatého (barytová voda) Postup: Sypký vzorek se pomocí násypky vpraví do suché žíhačky a převrství se oxidem měďnatým. Kapalný vzorek se vpraví do žíhačky pipetkou nebo kapilárkou tak, aby se nepotřísnily stěny žíhačky, a opatrně se navrství oxid měďnatý, pokud možno bez promísení obou 35 vrstev. Nejdříve se postupně rozžhaví vrstva činidla, teprve potom se spaluje látka. Podmínkou úspěchu této zkoušky je reakce rozkladných produktů vzorku s rozžhaveným činidlem. Unikající plyny se zavedou do zkumavky s asi 1 ml barytové vody (viz obrázek). Bílý zákal nebo bílá sraženina je důkazem přítomnosti uhlíku v původní látce. Na chladnějších stěnách žíhačky kondenzující kapky vody jsou důkazem přítomnosti vodíku (u nesušených vzorků neprovádíme). Pozn.: protože každá organická látka obsahuje uhlík, často jako důkaz uhlíku (důkaz organické látky) postačí černý zbytek v žíhačce při orientačních zkouškách. DUSÍK, SÍRA A HALOGENY Princip: Redukční mineralizace směsí kovového hořčíku a uhličitanu draselného 1/ za přítomnosti dusíku vzniká kyanid, který dokážeme jako berlínskou modř 2/ za přítomnosti síry vzniká sulfid, který dokážeme jako černý sulfid železnatý, resp. železitý nebo nitroprusidem sodným 3/ za přítomnosti halogenů vzniká halogenid, který dokážeme jako nerozpustnou stříbrnou sůl (rozlišení – viz dále) Činidla: hořčík a uhličitan draselný směs 1 : 2, síran železnatý, 0,1M dusičnan stříbrný, 5% chlorid vápenatý, 3M kyselina chlorovodíková, 2M kyselina dusičná, 20% hydroxid sodný, 2M kyselina octová Postup: Analyzovaná látka umístěná v žíhačce se převrství činidlem a poklepem na stěny žíhačky se vytvoří kanálek pro unikající plyny. Nejdříve se rozžhaví vrstva činidla, teprve potom analyzovaná látka. Po dokonalém vyžíhání se ještě žhavá žíhačka vhodí do zkumavky s vodou (cca 10 ml). Prudkou změnou teploty žíhačka popraská a obsah se vylouží. Výluh se zfiltruje a připraví se pro další zkoušky. 1/ Důkaz kyanidu jako berlínské modři K první části výluhu se přidá tuhý síran železnatý. Vzniká špinavě zelená sraženina zásaditých solí železa, která postupně tmavne (za přítomnosti sulfidu – síry v původním vzorku – vzniká ihned černá sraženina směsi sulfidů železa). Okyselením zředěnou kyselinou chlorovodíkovou vzniká typicky modrá sraženina berlínské modři. V přítomnosti síry se černá sraženina po okyselení kyselinou chlorovodíkovou rozpustí a uvolňuje se smrdutý sirovodík, takže sulfidy důkaz dusíku jako kyanidu, resp. jako berlínské modři potom neruší. Sníží se však citlivost důkazu: reakční směs je zbarvena jen světle zeleně a sraženina bývá málo zřetelná nebo vzniká koloidní roztok. V tom případě lze sraženinu zakoncentrovat na bílém filtračním papíře, kde je modrá barva zřetelnější. Fe3+ + Fe2+ + 6 CN→ FeIII [FeII (CN)6]- 2/ Důkaz sulfidu Viz předchozí důkaz kyanidu – nerozpustná sraženina sulfidu těžkého kovu: za přítomnosti sulfidu výluh po přidání železnatých iontů reaguje za vzniku černé sraženiny Fe2+ + S2→ FeS 36 Citlivější je reakce další části filtrátu s nitroprusidem sodným: několik kapek čerstvě připraveného činidla v přítomnosti sulfidické síry vytvoří purpurově červenou až fialovou barvu S2+ [Fe(CN)5NO]2→ [Fe(CN)5NOS]4- 3/ Důkaz halogenidů Fluoridy Důkaz přítomnosti fluoridu se provede okyselením jiné části výluhu zředěnou kyselinou octovou a přidáním roztoku chloridu vápenatého; vzniká bílá sraženina nerozpustného fluoridu vápenatého CaF2. Chloridy, bromidy a jodidy Princip: Organicky vázaný chlór, bróm nebo jód se zmineralizuje na halogenid, který se dokáže jako halogenid stříbrný. Rozlišení brómu a jódu se provede oxidací elementárním chlórem. Činidla: 0,1M dusičnan stříbrný, chloroform, 5% chloramin T, 2M kyselina dusičná, 2M kyselina sírová, 2M vodný roztok amoniaku Postup: a) Pokud vzorek obsahuje dusík nebo síru: vzorek se smísí se stejným množstvím práškového oxidu vápenatého, vpraví se do žíhačky, ještě se převrství vrstvou CaO a důkladně se vyžíhá. Obsah žíhačky se vylouží vodou, výluh se zfiltruje b) Neobsahovala-li látka dusík ani síru, použijeme původní zfiltrovaný mineralizační výluh Filtrát se rozdělí na dvě části. První díl se okyselí 2M HNO3 a přidá se roztoku dusičnanu stříbrného. (V případě, že přídavkem AgNO3 vznikne hnědočerná sraženina sulfidu stříbrného, roztok ve zkumavce krátce povaříme, tím sulfidy i kyanidy odstraníme). Zůstane-li v čirém roztoku bílá až žlutá sraženina, příp. je zřejmá opalescence nerozpustné stříbrné soli, je to důkaz halogenidů. Pak provedeme rozlišení halogenidů: • K přímému důkazu chlóru se využije rozpustnost zbylé sraženiny AgCl ve 2M amoniaku (vznik amminkomplexu). Následným okyselením dusičnou kyselinou se vyloučí zpět nerozpustný chlorid stříbrný, který stáním na vzduchu postupně tmavne (fotoreakce). Bromid stříbrný se rozpouští jen částečně, jodid stříbrný je v amoniaku nerozpustný. Rozlišení brómu a jódu se provede v jiné části výluhu • k jiné části filtrátu se přidá zředěná sírová kyselina, dále asi 1 ml chloroformu nebo tetrachlórmetanu a po kapkách za protřepávání roztok Chloraminu T. Vrstva organického rozpouštědla (spodní vrstva) se barví žlutě až hnědě (důkaz brómu), růžově až fialově (důkaz jódu). KYSLÍK 1/ Jódová zkouška Princip: Odlišná barva roztoku jódu v kapalných látkách kyslíkatých a bezkyslíkatých. Činidlo: jód 37 Postup: K velmi malému krystalku jódu na hodinovém sklíčku se přidá kapka vzorku. Přítomnost bezkyslíkaté látky se projeví vznikem roztoku fialové barvy. V kyslíkatých sloučeninách se jód rozpouští hnědě (žlutě). Poznámka: zkouška se provádí pouze s kapalnými vzorky, a ještě za předpokladu, že prvkovou analýzou nebyla dokázána přítomnost dusíku, síry nebo jódu (za přítomnosti těchto prvků dochází k chybným výsledkům). Důkaz je výhodný pro rozlišení kapalných látek třídy rozpustnosti N (výšemolekulární kyslíkaté sloučeniny od nenasycených uhlovodíků). DUSÍK 2 – DŮKAZ NATRONOVÝM VÁPNEM 1/ Důkaz dusíku vytěsněním amoniaku natronovým vápnem Princip: Působením silné alkálie uvolňují dusíkaté látky s vazbou dusíku podobnou amoniaku plynný amoniak nebo těkavý amin, (-N-) + NaOH → NH3  který se dokáže reakcí s jodortuťnatanem (Nesslerovým činidlem) za vzniku hnědé sraženiny amidjodortuťnatého komplexu [Hg(NH2)I]. Činidla: natronové vápno (směs hydroxidu sodného a vápenatého s uhličitanem), jodortuťnatan sodný (Nesslerovo činidlo) Postup: Vzorek se rozetře se stejným množstvím natronového vápna, násypkou se vpraví do žíhačky a převrství natronovým vápnem. Kapalný vzorek se nakape na natronové vápno již umístěné v žíhačce a znovu se převrství činidlem. Směs se žíhá a unikající amoniak se indikuje zvlhčeným pH papírkem (zelenomodré zbarvení) nebo visutou kapkou Nesslerova činidla na skleněné tyčince (hnědé zbarvení). Poznámka: zkouška není univerzální, negativní výsledek nevylučuje přítomnost dusíku (nereagují azo-, nitro-, nitrososloučeniny). HALOGENY 2 – BEILSTEINOVA ZKOUŠKA 1/ Důkaz s mědí (Beilsteinova zkouška) - chlór, bróm, jód Princip: převedení organicky vázaného halogenu na těkavý halogenid měďnatý, který barví plamen zeleně. Postup: měděný drátek vyklepaný na konci do lopatičky se zbaví nečistot (nesmí barvit plamen) několikanásobným ponořením do zkumavky s koncentrovanou kyselinou dusičnou a žíháním v oxidační části plamene. Na tuto lopatičku se potom vpraví vzorek a vloží se do okraje nesvítivého plamene. Za přítomnosti halogenů ve vzorku se barví plamen zeleně (zelenomodře). Poznámka: zkouška má orientační charakter. Přítomnost halogenů ve vzorku je vyloučena negativní Beilsteinovou zkouškou, naproti tomu pozitivně mohou reagovat i enoly, oximy, močovina nebo thiomočovina (tyto látky barví plamen). 38 ROZPUSTNOST I když rozpustnost látky se může zdát být ne-chemickou vlastností dané sloučeniny, v termodynamickém smyslu je proces rozpouštění chemickou reakcí – proto nás výsledek zkoušky rozpustnosti informuje o vlastnostech látky – o její polaritě, velikosti molekuly (případně asociaci) a hydrofilním anebo hydrofobním případně acidobazickém charakteru, což je výslednicí druhu a počtu přítomných funkčních skupin. Při zařazování látek do příslušných tříd rozpustnosti se pracuje kromě solvatačních rozpouštědel (voda a ether) také s 3 - 5% vodnými roztoky hydroxidu sodného, hydrogenuhličitanu sodného, kyseliny chlorovodíkové a s koncentrovanou kyselinou sírovou. Tyto roztoky a koncentrovaná kyselina sírová bývají kvůli své acidobazické povaze nazývány "reaktivními rozpouštědly". Označení typu rozpustnosti písmeny S, A, B, M, N, I představuje začáteční písmena mezinárodně vžité nomenklatury: S = soluble = rozpustný, A = acid = kyselý, B = basic = zásaditý, M = miscellaneous = rozmanitý, N = neutral = neutrální, I = inert = nereaktivní. Je třeba dodat, že praktické provedení pokusu (poměr množství analyzované látky ke konečnému objemu reakční směsi) je otázkou dohody: je zřejmé, že rozpustnost (reaktivita) každé sloučeniny má své meze. Postup: K asi 20 mg dobře rozetřené tuhé látky v konické zkumavce nebo v mikrozkumavce anebo k 1 kapce kapaliny se přidá 0,3 ml rozpouštědla nebo vodného roztoku činidla, resp. koncentrované kyseliny sírové. Směs se nezahřívá a po protřepání se zhodnotí výsledek jako pozitivní tehdy, když se látka rozpustí nebo zreaguje za tvorby čirého roztoku. V případě neúplného rozpuštění se hodnotí výsledek jako negativní. Poznámka: Je-li dostatek vzorku, doporučuje se pro snazší rozhodování nejdříve s kapalným vzorkem a vodou v poměru 1 : 1 vyzkoušet, zda je zkoumaná kapalina lehčí nebo těžší než voda. Tímto jednoduchým pokusem v rámci orientačních zkoušek se zjistí, zda máme vrstvu nerozpuštěné kapaliny při zjišťování její rozpustnosti hledat v horní nebo dolní vrstvě. POZNÁMKY KE KLASIFIKACI DO SKUPIN M, I, N Zkoušky s koncentrovanou kyselinou sírovou U zkoušky s koncentrovanou kyselinou sírovou se hodnotí jako pozitivní výsledek zřetelná reakce, i když nevede k tvorbě čirého roztoku (nebere se v úvahu zahřátí reakční směsi nebo začínající hnědnutí – 39 karbonizace látky). Pro zařazení do skupin M, N nebo I musíme znát výsledek prvkové analýzy – v případě, že látka obsahuje kromě uhlíku ještě některý z následujících prvků – vodík, kyslík nebo halogen, zkouší se u ní reakce s koncentrovanou kyselinou sírovou (viz Tabulka rozpustnosti str. 40). V případě, že látka obsahuje ještě některý další prvek, např. dusík, síru, fosfor atd., zkouška s kyselinou sírovou se neprovádí a látka se zařadí do skupiny M. V případě, že látka obsahuje jód nebo bróm, neprovádí se zkouška s koncentrovanou kyselinou sírovou (došlo by k reakci a nesprávnému zařazení) a připustí se možnost tříd rozpustnosti N nebo I. Rozlišení ve skupině N Pro rozlišení nenasycených uhlovodíků od kyslíkatých sloučenin v obsáhlé skupině N je 1/ důležitý důkaz kyslíku a 2/ jak jednotlivé typy sloučenin patřících do této skupiny reagují s koncentrovanou kyselinou sírovou: a) primární a sekundární alkoholy se esterifikují b) terciární alkoholy dehydratují a potom reagují jako nenasycené uhlovodíky c) nenasycené uhlovodíky kyselinu sírovou adují na násobnou vazbu za vzniku esterů kyseliny sírové d) ethery, aldehydy, ketony, estery, anhydridy a laktony reagují s koncentrovanou kyselinou sírovou jako zásady, takže probíhá reakce za vzniku oxoniových solí. 40 Tabulka rozpustnosti (mísitelnosti) jednotlivých tříd Rozpouštědlo/činidlo voda ether NaOH NaHCO3 HCl konc. H2SO4 ✓ ✓ S1 ✓  S2  ✓ ✓  A1  ✓   A2  ✓ ✓ ✓ A1B  ✓  ✓ A2B   ✓ B    M    ✓ N     I ✓ rozpustný  nerozpustný DOPORUČENÝ ZPŮSOB URČENÍ TŘÍDY ROZPUSTNOSTI 41 Typické organické látky podle tříd rozpustnosti S1 (monofunkční sloučeniny do C5) ROZPUSTNÉVEVODĚ neutrální aldehydy, ketony, alkoholy, estery, některé amidy (kromě formamidu a acetamidu) kyselé karboxylové kyseliny, některé fenoly zásadité nízkomolekulární alifatické aminy, některé dusíkaté heterocykly S2 (silně polární monofunkční, difunkční a polyfunkční sloučeniny) neutrální aminosulfonové kyseliny, cukry, formamid nebo acetamid kyselé sulfonové kyseliny, polykarboxylové kyseliny, thiomočovina, amoniové soli organických zásad zásadité polyaminy, polyaminy, alkalické soli organických kyselin, aminoalkoholy A1 NEROZPUSTNÉVEVODĚ Silně kyselé látky aromatické karboxylové kyseliny, silně negativně substituované fenoly, aminosulfonové kyseliny A2 Slabě kyselé látky fenoly a výšemolekulární alifatické karboxylové kyseliny, enoly, thioly, thiofenoly, nesubstit. a monosubstit. sulfonamidy, imidy, oximy, primární a sekundární nitrosloučeniny B Zásadité látky aminy (zejména aromatické) a dusíkaté heterocykly (např. alkaloidy) A1B A2B Amfoterní látky aminokyseliny, aminofenoly, aminosulfonamidy M Neutrální látky neutrální aminy (diaryl- a triarylaminy), vysokomolekulární amidy, terciární nitro- a nitrososloučeniny, azosloučeniny, disubstituované sulfonamidy, ve vodě nerozpustné soli, sulfony N Neutrální látky výšemolekulární aldehydy, ketony, estery, alkoholy, nenasycené uhlovodíky I Inertní látky nasycené uhlovodíky včetně aromatických (kyslíkatá výjimka = diarylethery) 42 DŮKAZY FUNKČNÍCH SKUPIN HALOGENY Rozlišení reaktivity halogenu reakcí s alkoholickým roztokem AgNO3 Činidla: 2% ethanolický roztok AgNO3, konc. ethanol Postup: vzorek se rozpustí v ethanolu a přidá se 0,5 ml ethanolického roztoku dusičnanu stříbrného. Pozoruje se vznik sraženiny, a to: a) reagují za chladu - halogenidy karboxylových a arylsulfonových kyselin, jodalkany, všechny typy arylmethylhalogenidů, - a − halogenderiváty nenasycených uhlovodíků, terciární alkylbromidy a alkyljodidy b) reagují za tepla - halogenalkany s výjimkou již uvedených typů a monotopických polychlorderivátů, které nereagují vůbec c) nereagují - monotopické polychlorderiváty, ryze aromatické halogensloučeniny, -halogenderiváty nenasycených uhlovodíků ALKOHOLY (SKUPINA -OH NA ALIFATICKÉM ŘETĚZCI) Nízkomolekulární alkoholy se ve vodě rozpouštějí (třída rozpustnosti S1). Výšemolekulární jsou nerozpustné ve vodě – esterifikují se s konc. kyselinou sírovou (třída rozpustnosti N). Polyoly jsou ve vodě rozpustné látky, které se pro svou polaritu nerozpouštějí v etheru (třída rozpustnosti S2). Primární alkoholy (-CH2-OH) a sekundární alkoholy (=CH-OH) mají redukční vlastnosti. Reakce primárních a sekundárních alkoholů Činidla: tetrajodortuťnatan draselný (Nesslerovo činidlo) Postup: Vzorek se povaří asi s 0,5 ml Nesslerova činidla. Za přítomnosti primárních a sekundárních alkoholů vznikne žlutohnědá sraženina, která po chvíli šedne. Důkaz a rozlišení primárních a sekundárních alkoholů Činidla: 5% dichroman draselný, 2M kyselina sírová, vodný nebo ethanolický roztok 2,4-dinitro-fenylhydrazinu, nasycený fuchsin odbarvený siřičitanem (Schiffovo činidlo) Postup: K 0,5 ml vzorku ve zkumavce se přidá 5 ml roztoku dichromanu a 2 ml zředěné kyseliny sírové. Zkumavka se uzavře zátkou s otvorem, ve kterém je umístěna zahnutá trubička. Ústí trubičky směřuje do druhé zkumavky, reakční směs se zahřívá nad kahanem a destilát se jímá do asi 1 ml destilované vody. 43 Schéma jednoduché aparatury pro důkaz primárních a sekundárních alkoholů a) K prvnímu podílu destilátu se přidá roztok 2,4dinitrofenylhydrazinu. Za přítomnosti aldehydu nebo ketonu (vzniklého oxidací primárního nebo sekundárního alkoholu) se vysrážejí žluté nebo oranžové krystalky příslušného hydrazonu. b) Byla-li zkouška a) pozitivní, přidá se ke druhému dílu destilátu 0,5 ml Schiffova činidla. Schiffova reakce probíhá pouze v kyselém prostředí (pH = 3), proto se směs podle potřeby okyselí kyselinou sírovou na žádané pH a protřepe se ve zkumavce. Za přítomnosti aldehydu (oxidačního produktu primárního alkoholu v původním vzorku) vznikne fialové zbarvení. Ketony (tj. oxidační produkty sekundárních alkoholů) nereagují. Rozlišení alkoholů – reakce s Lucasovým činidlem (ZnCl2 + konc. HCl) Reakce je založena na tvorbě alkylchloridů v silně kyselém prostředí R3C-OH + HCl → R3C-Cl + H2O Rychlost této reakce je klíčová pro rozlišení typu alkoholů. Ihned reagují terciární alkoholy, pomalu sekundární (2–5 minut) a primární vůbec ne. Pozitivní reakce se projeví zákalem ve vodě nerozpustného alkylchloridu. Důkaz polyolů Je založen na tvorbě chelátů s kyselinou boritou (kondenzace) – vzniklá kyselina neutralizuje zásaditý tetraboritan disodný OH-(CHCH3)2-OH + Na2B4O7 → H [ ] Činidla: tetraboritan sodný, fenolftalein Postup: Asi k 0,5 ml nasyceného roztoku tetraboritanu se přidá 1 kapka fenolftaleinu (vznikne malinové zbarvení) a sleduje se, zda přidáním vzorku dochází k odbarvení. Poznámka: Vzorek nesmí být kyselý. O B O OH OH 44 FENOLY (SKUPINA -OH NA AROMATICKÉM JÁDŘE) Fenoly jsou aromatické hydroxysloučeniny s jednou nebo několika hydroxyskupinami kyselého charakteru: míra kyselosti je dána povahou substituentů na aromatickém jádře. Prakticky ji posuzujeme u fenolů, které jsou většinou nerozpustné ve vodě, reakcí s 5% NaOH a 5% NaHCO3 (třída rozpustnosti A2, méně A1). Nesubstituovaný fenol, vícemocné fenoly a některé aminofenoly jsou ve vodě rozpustné (třída rozpustnosti S1). Některé analytické reakce jsou analogické reakcím alkoholů (acylace). Přítomnost aromatického jádra zvyšuje kyselost vodíku, hydroxy-skupina zase aktivuje jádro (substituční a kopulační reakce). Vícemocné fenoly a aminofenoly mají redukční charakter. Reakce s hexakyanoželezitanem a železitými ionty Činidla: 15% chlorid železitý, 1% hexakyanoželezitan draselný Postup: Na filtrační papír se kápne 1 kapka vzorku, 1 kapka roztoku chloridu železitého a 1 kapka hexakyanoželezitanu draselného. Za přítomnosti fenolu vzniká tmavě modrá skvrna berlínské modři KFeIII [FeII (CN)6] (viz důkazy Fe3+ ). Poznámka: Je nutné provést vždy i slepý pokus, protože samo činidlo časem zelená. Reakce s diazoniovou solí Činidla: 0,3% kyselina sulfanilová v 8% kyselině chlorovodíkové, dusitan sodný, 20% hydroxid sodný Příprava činidla: Těsně před provedením reakce se smísí 5 ml roztoku kyseliny sulfanilové s 0,5 ml čerstvě připraveného 5% roztoku dusitanu sodného (za chlazení ledem). Postup: Na kapkovací desce nebo filtračním papíře se ke kapce činidla přidá 1 kapka ethanolického roztoku vzorku a kapka roztoku hydroxidu. Fenoly s volnou p-polohou nebo alespoň jednou o-polohou poskytnou žluté až červené azobarvivo. Oxidace vícemocných fenolů a aminofenolů v alkalickém prostředí Činidla: 20% hydroxid sodný Postup: Ke vzorku se přidá roztok hydroxidu sodného. Vzniká hnědé až fialové zbarvení chinoidních rozkladných produktů. Poznámka: 1,3- dihydroxybenzeny reagují méně ochotně než 1,2- a 1,4dihydroxysubstituované deriváty. NH2HSO3 N N OH N NHSO3 OH HNO2 45 KARBONYLOVÉ SLOUČENINY (SKUPINA -C=O, -COH) Látky s karbonylovou funkční skupinou C=O jsou aldehydy a ketony. Mají neutrální charakter a nacházejí se ve třídě rozpustnosti S1 (nízkomolekulární) nebo N (výšemolekulární). Jsou též typickou součástí cukrů (třída rozpustnosti S2). Charakteristickou reakcí pro karbonylové sloučeniny jsou kondenzační reakce (např. reakce s 2,4-dinitrofenylhydrazinem – viz také oxidace alkoholů). Aldehydy jsou reaktivnější než ketony; na rozdíl od ketonů mají redukční schopnosti. Důkazové reakce pro ketony jsou nepřímé – potvrdí-li se karbonyl a následně vyloučí aldehyd, předpokládáme keton. Reakce s 2,4-dinitrofenylhydrazinem (2,4-DNPH) Činidla: 2,4-dinitrofenylhydrazin, nasycený ethanolický roztok, hydroxid sodný 20% Postup: Na filtrační papír se nanese 1 kapka vzorku, kapka činidla a nakonec kapka hydroxidu. Za přítomnosti karbonylu vzniká fialové zbarvení. ALDEHYDY Reakce se stříbrnými ionty (Tollensova reakce) Činidla: 0,1M dusičnan stříbrný, 20% hydroxid sodný, amoniak Příprava činidla: před upotřebením se smísí v malé zkumavce roztoky dusičnanu stříbrného a hydroxidu sodného v poměru 1:1 a přidává se po kapkách koncentrovaný amoniak za intenzivního protřepávání, až se vyloučený oxid stříbrný právě rozpustí. Postup: Několik kapek vodného nebo ethanolického roztoku vzorku se přidá k 1 ml činidla a ponechá se v klidu, případně se mírně zahřeje. Směs ztmavne a po chvíli se na stěnách zkumavky vytvoří stříbrné zrcadlo. Proběhne-li reakce příliš rychle, neutvoří se zrcadlo, ale černá sraženina. RCOH + 2 Ag+ + H2O → RCOOH + 2 Ag0 + 2H+ Poznámka: Kromě aldehydů reagují pozitivně i jiné oxidovatelné látky jako aminofenoly, polyfenoly, některé organické aminy, organické deriváty hydrazinu a hydroxylaminu, redukující cukry a jiné. 46 Reakce s fuchsinem odbarveným siřičitanem (Schiffova reakce) Činidla: fuchsin odbarvený siřičitanem (Schiffovo činidlo) Postup: Ke kapce činidla v malé zkumavce se přidá vzorek okyselený na pH asi 3. Za přítomnosti aldehydu vzniká modrofialové zbarvení. KARBOXYLOVÉ KYSELINY (SKUPINA -COOH) Karboxylové kyseliny jsou látky kyselého charakteru (ve vodě rozpustné kyseliny lze potvrdit univerzálním pH papírkem). Nízkomolekulární kyseliny patří do třídy rozpustnosti S1, výšemolekulární do třídy rozpustnosti A1 nebo A2. Alifatické dikarboxylové kyseliny jsou v důsledku přítomnosti dvou hydrofilních karboxylů nerozpustné v etheru - třída rozpustnosti S2. Aromatické dikarboxylové kyseliny jsou naproti tomu ve vodě nerozpustné. Analytické reakce karboxylových kyselin jsou založeny na a) disociaci karboxylů (tvorba solí) b) reaktivitě hydroxylové skupiny karboxylů (esterifikace, tvorba chloridu a následná hydroxamová reakce) c) rozklad karboxylů (dekarboxylace) Hydroxamová reakce (vznik železitých solí hydroxamových kyselin) Činidla: thionylchlorid, nasycený ethanolický roztok chloridu hydroxylamonného, 10% ethanolický roztok hydroxidu sodného, 15% chlorid železitý, 3M kyselina chlorovodíková Převedení na acylchlorid Postup pro kapalný vzorek: K 5 kapkám vzorku ve zkumavce se přidá 5 kapek thionylchloridu a asi 3 minuty se protřepává (pracujeme v digestoři!) Postup pro tuhý vzorek: K několika krystalkům látky ve zkumavce se přidá 1 ml thionylchloridu a 10 minut se (v digestoři) zahřívá na vodní lázni. Postup: K čerstvě připravenému acylchloridu se přidá asi 1 ml roztoku chloridu hydroxylamonného a zalkalizuje se hydroxidem do slabě alkalické reakce. Mírně se povaří a po chvíli okyselí zředěnou kyselinou R O OH R O Cl SOCl2 NH2OH R O NHOH Fe3+ R O NHO Fe 2+ hydroxamová kyselina chelát 47 chlorovodíkovou a přidají se 2 ─ 3 kapky chloridu železitého. V pozitivním případě vzniká červené, červenohnědé až fialové zbarvení. Poznámka: Analogicky probíhá reakce u derivátů karboxylových kyselin (anhydridy, laktony, estery, amidy). Tyto reagují s hydroxylaminem bez převedení na chlorid. Esterifikace Činidla: konc. ethanol, konc. kyselina sírová, NaOH Postup: Vzorek se smísí s 1 ml ethanolu, 5 kapkami kyseliny sírové a směs se zahřeje na vodní lázni. Po ochlazení, neutralizaci hydroxidem na acidobazický indikátor a zředění se projeví ovocná vůně esteru. RCOOH + EtOH → RCOOEt + H2O Poznámka: Reakce je vhodná pouze pro nízkomolekulární kyseliny. Obdobně reagují anhydridy a laktony kyselin. Tvorba solí Činidla: 0,1M NaOH, 0,1M dusičnan stříbrný, 5% chlorid vápenatý Postup: Roztok nebo suspenze vzorku ve vodě se opatrně neutralizuje hydroxidem na pH 7 ─ 8 na univerzální indikátorový papírek. Reakční směs se rozdělí na dvě části: 1. K prvé části se přidá roztok dusičnanu stříbrného - vznik bílé nerozpustné stříbrné soli je důkazem karboxylu. 2. Vznikne-li po přidání roztoku chloridu vápenatého ke druhé části rovněž bílá sraženina, jedná se o dikarboxylovou kyselinu. RCOOH + Ag+ → RCOOAg  + H+ R(COOH)2 + Ca2+ → R(COO)2Ca  + 2 H+ Poznámka: Neutrální prostředí je důležitou podmínkou správného posouzení výsledku reakce. ESTERY (SKUPINA -COOR, -COOAr) Estery jsou látky neutrálního charakteru. Nízkomolekulární patří do třídy rozpustnosti S1, ostatní jsou látky ve vodě nerozpustné - třída rozpustnosti N. Nízkomolekulární estery snadno hydrolyzují a reagují ve vodném roztoku kysele. 48 Hydroxamová reakce Činidla: nasycený ethanolický roztok chloridu hydroxylamonného, 10% ethanolický roztok hydroxidu sodného, 15% chlorid železitý, 3M HCl Postup: Reakce se provádí postupem uvedeným v předchozí kapitole u karboxylových kyselin, jen s tím rozdílem, že se vypustí reakce s thionylchloridem - hydroxamová kyselina vznikne přímo reakcí esteru s hydroxylaminem. Poznámka: Bez převedení na chlorid, stejné jako estery, reagují i jiné deriváty kyselin (anhydridy, laktony, halogenidy atd.). Hydrolýza esterů Činidla: 80% ethanol, 0,1M hydroxid sodný, fenolftalein Postup: Vzorek se rozpustí v ethanolu, přidá se 1 kapka fenolftaleinu a tolik hydroxidu (přidáváme po kapkách), až vznikne růžové zbarvení. Směs se zahřeje. Za přítomnosti esteru dojde k odbarvení fenolftaleinu, protože se spotřebuje bazický OHRCOOR* + OH→ RCOO+ R*OH Poznámka: Reakce má význam v tom případě, kdy analyzovaná látka sama není kyselá. Reakce je společná pro acylhalogenidy a halogensloučeniny, které se hydroxidem sodným hydrolyzují, anhydridy a laktony. ETHERY (R - O - R, R - O - Ar) Ethery jsou hydrofobní, nepatrně polární neutrální kyslíkaté sloučeniny. Jsou ve vodě nerozpustné (třída rozpustnosti N a I). Štěpení etherové vazby probíhá obtížně a navíc pouze v případě alkyletherů, diarylethery jsou prakticky nereaktivní; lze je prokázat spektroskopicky silnou C-O vibrací 1230 – 1270 cm-1 . Ferroxový test Činidla: síran amonno-železitý nebo FeCl3, pevný KSCN R O OR* NH2OH R O NHOH Fe3+ R O NHO Fe 2+ hydroxamová kyselina chelát 49 Postup: Do jednoho důlku kapkovací destičky (zkumavky) se vnesou krystalky železité soli a thiokyanatanu, rozetřou se koncem skleněné tyčinky. Tato tyčinka s ulpělými krystalky se pak ponoří do důlku (zkumavky) s kapalným vzorkem nebo vzorkem rozpuštěným v toluenu. Pozitivní reakce se projeví intenzivní červenofialovou barvou komplexu Fe[Fe(SCN)6]. Poznámka: Tento test není specifický pro ethery, reagují všechny látky s kyslíkatou funkční skupinou. Lze jej použít i pro odlišení kyslíkatých a bezkyslíkatých uhlovodíků. AMIDY (SKUPINA -CONH2, -CONH-, -CON= ) Amidy jsou neutrální deriváty karboxylových kyselin. Rozpustné ve vodě patří do třídy rozpustnosti S1 (s výjimkou amidu kyseliny mravenčí a octové – třída rozpustností S2), výšemolekulární do třídy M. Imidy a sulfonamidy (nesubstituované a monosubstituované) vzhledem k reakci s 5% NaOH patří do třídy rozpustnosti A2. Amidy jsou dokazatelné jako amoniak (viz prvková analýza) resp. u lehce hydrolyzovatelných amidů je kromě amoniaku produkována karboxylová kyselina. Reakce s kyselinou dusitou – uvolnění dusíku Činidla: pevný dusitan sodný, 3M kyselina chlorovodíková Postup: K asi 1 ml zředěné kyseliny chlorovodíkové se přidá malé množství pevného dusitanu sodného a po vyšumění plynů několik krystalků vzorku. Unikají bublinky elementárního dusíku. Poznámka: Podobně reagují primární alifatické aminy. Alkalická hydrolýza – uvolnění amoniaku Činidla: 20% roztok hydroxidu sodného Postup: Vzorek se povaří s 1 ml roztoku hydroxidu sodného. Unikající amoniak zbarví univerzální indikátorový papírek (předem navlhčený destilovanou vodou) modře. Poznámka: U těžko hydrolyzovatelných amidů je zkouška negativní. R O NH2 HNO2 R O OH N2 R O NH2 OH- R O O- NH3+ 50 AMINY (SKUPINY -NH2, -NH-, -N= ) Aminy jsou dusíkaté, většinou zásadité organické sloučeniny. Míra zásaditosti je dána typem aminu, druhem a umístěním substituentů. Aminy rozpustné ve vodě (třída rozpustnosti S1) a polyaminy (třída rozpustnosti S2) jsou zřetelně zásadité. Výšemolekulární aminy nerozpustné ve vodě reagují s 5% HCl (třída rozpustnosti B) s výjimkou tzv. neutrálních aminů (třída rozpustnosti M). Ke společnému důkazu všech typů aminů se využívá jejich zásaditosti. Rozlišení aminů selektivními reakcemi je v některých případech (Ar­NH2) jednoduché. Nejobtížněji se dokazuje přítomnost sekundárních (Ar­NH­) a terciárních (Ar­N=) aromatických aminů (viz Tabulka str. 54). Skupinové reakce Reakce s 2,3-butandiondioximem a Ni2+ Činidla: butandiondioximát (dimethylglyoximát) nikelnatý Postup: Na kapkovací desku se nanese 1 kapka činidla a k ní se přidá 1 kapka vzorku (případně jeho vodného nebo ethanolického roztoku). Za přítomnosti aminů, které vytvářejí mírně bazické prostředí, vznikne charakteristicky zbarvená růžová sraženina komplexu nikelnatého kationtu. Poznámka: Nereagují tzv. "neutrální aminy”. Reakce s kyselinou pikrovou V principu jde o neutralizační reakci za tvorby pikranů (solí) s protonizovanými aminy Činidla: nasycený ethanolický roztok kyseliny pikrové Postup: k 1 ml vzorku se přidá 1 ml kyseliny pikrové. Směs se zahřeje k varu na vodní lázni a ochladí. Pozitivní reakcí je vznik intenzivně žlutých krystalků NO2 NO2 NO2 OH NO2 NO2 NO2 O+ B + BH+ N N O O H N N O O H Ni2+ N N OH OH + Ni2+ baz. amin 51 Selektivní reakce Reakce s kyselinou dusitou, rozlišení aminů Charakteristickou reakcí aminů je reakce s kyselinou dusitou. Primární aminy reagují jak alifatické (uvolňují se bublinky dusíku), tak aromatické (ty se diazotují a po kopulaci s aromatickým naftolem/fenolem poskytují intenzivně žlutá až červená azobarviva). Sekundární alifatické aminy poskytují žluté nitrosaminy. Barevnou změnu lze zvýraznit následnou reakcí s konc. kyselinou sírovou a fenolem (Liebermannova reakce) za vzniku zelenomodrého chinoniminového barviva. Terciární aminy nereagují. Schéma reakcí aminů s kyselinou dusitou DŮKAZ PRIMÁRNÍCH ALIFATICKÝCH AMINŮ Reakce s kyselinou dusitou Činidla: pevný dusitan sodný, 3M kyselina chlorovodíková Postup: K asi 1 ml zředěné kyseliny chlorovodíkové se přidá malé množství pevného dusitanu sodného a po vyšumění plynů několik krystalků vzorku. Unikají bublinky elementárního dusíku. Viz schéma reakcí s kyselinou dusitou R1 N R2 H R1 N R2 NO H2SO4 OH OHON OHNO R1 N R2 R3 + NH2 NH2 HNO2 NH2 NH2 OH N N N N NH N N HO HO (triazol) OH HNO2 HNO2 nereagují (Liebermannova reakce) + plynný dusík 52 DŮKAZ PRIMÁRNÍCH AROMATICKÝCH AMINŮ Reakce s kyselinou dusitou Činidla: pevný dusitan sodný, 3M kyselina chlorovodíková, 2-naftol, 20% NaOH Postup: Do zkumavky se připraví čerstvý roztok 2-naftolu v hydroxidu sodném (stačí krystalek 2-naftolu). Ve druhé zkumavce se rozpustí v několika kapkách koncentrované kyseliny chlorovodíkové vzorek a za chlazení ledem se přidá několik krystalků dusitanu. Oba roztoky se smísí - vzniká charakteristické azobarvivo (oranžové, červené). Viz schéma reakcí s kyselinou dusitou Reakce s 4-dimethyl-aminobenzaldehydem (4-DMABA) Činidla: 1% 4-dimethylaminobenzaldehyd Postup: K 1 kapce vodného nebo ethanolického roztoku vzorku na filtračním papíře se přidá 1 kapka činidla. Za přítomnosti primárního aromatického aminu vzniká žluté, oranžové nebo červené zbarvení. DŮKAZ PRIMÁRNÍCH AMINŮ Isonitrilová reakce Činidla: hydroxid sodný, chloroform, ethanol Postup: Vzorek ve zkumavce se rozpustí asi v 1 ml ethanolu, přidá se zrnko tuhého hydroxidu, několik kapek chloroformu a směs se mírně zahřeje. Za přítomnosti primárních aminů vzniká charakteristický zápach isonitrilů. R-NH2 + CHCl3 + 3 KOH → R-NC + 3 KCl + 3 H2O Poznámka: pracujeme v digestoři DŮKAZ SEKUNDÁRNÍCH ALIFATICKÝCH AMINŮ Reakce s kyselinou dusitou Činidla: pevný dusitan sodný, 3M kyselina chlorovodíková, 2-naftol, 20% hydroxid sodný, konc. kyselina sírová, fenol N O NH2 + H+ N NH+ 53 Postup: K asi 1 ml zředěné kyseliny chlorovodíkové se přidá malé množství pevného dusitanu sodného a 1 ml vzorku. Vznikají žluté nitrosaminy, které se dají ještě následně dokázat výraznější barevnou změnou (Liebermannova reakce): analyzovaná látka se smísí se koncentrovanou kyselinou sírovou a fenolem a směs se zahřeje na vodní lázni. Vznikne červené zbarvení, které po ochlazení směsi a alkalizaci hydroxidem přechází do zelena až modrofialova. Viz schéma reakcí s kyselinou dusitou Reakce s nitroprusidem a acetaldehydem (Simonova reakce) Činidla: A/ roztok nitroprusidu sodného Na2[Fe(CN)5NO] v acetaldehydu, B/ uhličitan sodný, nasycený vodný roztok Postup: K 1 kapce vodného nebo ethanolického roztoku vzorku na kapkovací desce se přidá 1 kapka roztoku A/ a zalkalizuje se dle potřeby několika kapkami roztoku B/. Za přítomnosti sekundárního alifatického aminu vznikne modré až fialové zbarvení nejasného složení. DŮKAZ PRIMÁRNÍCH A SEKUNDÁRNÍCH AMINŮ Reakce s acetylchloridem Acetylací vzniká N-amid, který je nerozpustný Činidla: acetylchlorid Postup: K 5 kapkám vzorku v malé zkumavce se přidají 3 kapky acetylchloridu. Za přítomnosti primárních nebo sekundárních aminů vznikne bílá sraženina. DŮKAZ PRIMÁRNÍCH A SEKUNDÁRNÍCH AROMATICKÝCH AMINŮ Reakce s ligninem Činidla: novinový papír, 3M kyselina chlorovodíková, ethanol Postup: Asi 5 kapek (nebo malé množství pevného) vzorku se v malé zkumavce smísí se 2 kapkami ethanolu. 1 kapka této směsi se nanese na novinový papír. Až se kapka vsákne, pokápne se 1 kapkou kyseliny chlorovodíkové. Za přítomnosti primárního nebo sekundárního aromatického aminu vznikne oranžová až červená skvrna. Pozn.: reagují i tzv. „neutrální aminy“ R HN2 O Cl O NHR + 54 DŮKAZ TERCIÁRNÍCH AMINŮ Reakce s tetrajodbismutitanem (Dragendorffova reakce) Činidla: tetrajodobismutitan draselný (Dragendorffovo činidlo) Postup: Ke kapce vzorku na filtračním papíru se po vysušení přidá kapka činidla. Za přítomnosti terciárního aminu vznikne oranžové nebo červené zbarvení, případně sraženina. Souhrnná tabulka reakcí aminů Primární aminy Sekundární aminy Terciární aminy alifatické aromatické alifatické aromatické alifatické aromatické NITRO- A NITROSOSLOUČENINY (SKUPINY -NO2 A -NO) Nitrosloučeniny jsou bezbarvé nebo barevné sloučeniny obsahující ve své molekule skupinu -NO2. Pro silné elektrofilní vlastnosti zvyšuje nitroskupina kyselost kyselých funkčních skupin v molekule sloučeniny. Primární a sekundární alifatické nitrosloučeniny mohou izomerizovat v izonitrolátky a mají proto slabě kyselý charakter (třída rozpustnosti A2). Aromatické a terciární alifatické nitrosloučeniny patří do třídy rozpustnosti M - jsou to látky neutrální povahy. Nitrososloučeniny obsahují v molekule nitrososkupinu -NO, která je stálá pouze na terciárním uhlíku – existují terciární alifatické a aromatické nitrososloučeniny. Jsou to látky neutrální povahy patřící do třídy rozpustnosti Reakce s Ni2+ a butandiondioximem [BiI4]- lignin Nitroprusid4-DMABA lignin Reakce s kyselinou pikrovou Reakce s HNO2 Isonitrilová reakce Reakce s acetylchloridem 55 M. Nitrososloučeniny se skupinou -NO vázanou na primární nebo sekundární uhlík ihned přesmykují na odpovídající oximy (třída rozpustnosti A2). Z chemických reakcí se pro důkaz nitro- a nitrososloučenin využívá hlavně redukce. Primární amin, vzniklý redukcí, se pak dokazuje příslušnými reakcemi. Vzhledem k tomu, že důkazy alifatických nitrosloučenin a oximů jsou poměrně složité a časově náročné, naučíme se dokazovat a rozlišovat jen aromatické nitro- a nitrososloučeniny. Skupinové reakce Redukce zinkem Činidla: práškový zinek, 3M kyselina chlorovodíková, 20% hydroxid sodný Postup: Vzorek se ve zkumavce rozpustí asi v 5 ml ethanolu, přidá se 0,5 ml kyseliny chlorovodíkové a po částech práškový zinek. Po redukci se směs přefiltruje, filtrát okyselí kyselinou chlorovodíkovou. Redukcí vzniklý primární aromatický amin dokážeme reakcemi uvedenými v předchozí kapitole s důkazy aminů. Selektivní reakce NITROSOSLOUČENINY Reakce s fenolem v silně kyselém prostředí (Liebermannova reakce) Činidla: fenol, konc. kyselina sírová, 20% hydroxid sodný Postup: Analyzovaná látka se smísí se koncentrovanou kyselinou sírovou a fenolem a směs se zahřeje na vodní lázni. Vznikne červené zbarvení, které po ochlazení směsi a alkalizací hydroxidem přechází do zelena až modrofialova. 56 LABORATORNÍ CVIČENÍ 4. FYZIKÁLNÍ VLASTNOSTI LÁTEK STANOVENÍ FYZIKÁLNÍCH VLASTNOSTÍ ORGANICKÝCH SLOUČENIN. MĚŘENÍ BODU TÁNÍ, INDEXU LOMU, pH, HODNOCENÍ ROZPUSTNOSTI SILICE Abychom mohli dokonale charakterizovat sloučeninu, je třeba stanovit některé její fyzikální vlastnosti, např. hustotu, index lomu světla, bod tání a varu. Tyto fyzikální konstanty mohou zároveň sloužit jako kritéria čistoty zkoumaných látek. Látku lze považovat za čistou, jestliže se její fyzikální vlastnosti při opakování čisticích operací (destilace, krystalizace, sublimace apod.) dále nemění. TEPLOTA TÁNÍ Teplota tání je fyzikální konstanta, která velmi často slouží jako kritérium čistoty látek. Je to teplota, při které je tuhá látka v rovnováze se svojí taveninou. Čisté látky mají ostrou teplotu tání. Při běžně užívaných metodách pozorujeme intervaly teploty tání v rozmezí několika desetin až jednoho stupně Celsia. Již malé znečištění látky snižuje významně teplotu tání, a to i tehdy, jestliže samy nečistoty mají teplotu tání vyšší než čistá látka. Stanovení teploty tání v elektrickém bodotávku SMP11 (Stuart, Irsko) Dobře vysušenou a rozetřenou látku vpravíme do kapiláry, na jednom konci zatavené, o průměru 1 – 1,5 mm a délce asi 5 cm. Látka v kapiláře by měla tvořit vrstvu asi 2–4 mm. Při plnění postupujeme tak, že otevřeným koncem nabereme malé množství rozetřené látky a opatrně ji sklepeme na dno kapiláry. Postup několikrát opakujeme. Kapilára se vzorkem musí být v úrovni rtuťové nádobky teploměru. Teploměr i kapiláru obsahující vzorek upevníme do bodotávku podle obrázku. Zahříváme rychlostí 4–6 °C za minutu a v blízkosti teploty tání rychlostí asi 1–2 °C za minutu. Jakmile začnou tát drobné krystalky na stěnách kapiláry, zmírníme nebo přerušíme zahřívání. Po chvíli se krystaly zhroutí a roztají v taveninu, která se vzápětí vyjasní. V okamžiku utvoření taveniny odečteme teplotu tání. Teplota, při níž zmizí poslední krystal, je zpravidla o 2 – 3 °C vyšší než teplota tání, a musíme proto tolik stupňů odečíst od stanovené hodnoty teploty tání. Údaj teploty tání je reprodukovatelný nejvýše na ± 0,5 °C. Méně čisté látky tají v širším rozmezí teplot. Bodotávek SMP11 57 INDEX LOMU K identifikaci kapalných látek a stanovení jejich čistoty, popř. obsahu příměsí (nečistot), se používá také index lomu. Při přechodu paprsku světla optickým rozhraním dvou prostředí nestejné optické hustoty dochází k lomu – refrakci. V opticky řidším prostředí se světelný paprsek pohybuje rychleji, v opticky hustším prostředí pomaleji. Náhlá změna rychlosti při průchodu optickým rozhraním se projeví změnou směru paprsku. Poměr rychlostí světla v obou prostředích se rovná poměru sinů úhlu dopadu a lomu a nazývá se relativní index lomu (jako prostředí, k němuž se vztahuje naměřený index lomu, slouží z praktických důvodů vzduch). Vztah obecně formuloval W. Snell (Snellův zákon): 𝑛 = 𝑐1 𝑐2 = sin 𝛼 sin 𝛽 n = index lomu c1, c2 = rychlost světla v prostředí 1,2  = úhel dopadu  = úhel lomu Standardní vlnová délka a teplota se udávají jako indexy (např.: nD 20 ). Dolní index udává vlnovou délku použitého světla (obvykle se udává index lomu měřený při žluté spektrální čáře světla sodíku – linie D = 585 nm). Horní index udává teplotu, pro kterou je index lomu definován (20 °C). Index lomu závisí na dvojici optických prostředí, na vlnové délce světla a na teplotě a tlaku. Index lomu kapalin závisí na teplotě, a to tak, že jeho hodnota s rostoucí teplotou klesá. Při vzrůstu teploty o 1 °C poklesne jeho hodnota asi o 0,0003 – 0,0008. U tuhých látek je změna hodnoty indexu lomu menší než u kapalin. Princip měření indexu lomu Abbèho refraktometrem 58 Metoda stanovení indexu lomu se nazývá refraktometrie. Je založena na určování hodnoty mezního (kritického) úhlu. Při jeho zjišťování se dalekohledem pozoruje světlo vycházející ze skleněného hranolu. Přístroje pro taková měření se nazývají refraktometry. Existují různé typy refraktometrů. Nejvíce se vžilo rozdělení podle konstrukce (dvě skupiny): • refraktometry, u kterých jsou lomný hranol a okulár pohyblivé (Pulfrichův a Abbèho refraktometr) • refraktometry, u kterých má lomný hranol a okulár vzájemně neměnnou polohu (ponorný a ruční refraktometr) Běžně se používá refraktometr Abbèho, který je pro všestrannou použitelnost nazýván též univerzální. Je konstruován na principu stanovení mezního úhlu úplného odrazu na rozhraní a lze s ním měřit i za denního (polychromatického) světla v hodnotách odpovídajících sodíkové linii D. Přesnost stanovení je až ± 0,0001, rozsah měření 1,300 ─ 1,700. Pro přesné stanovení lze udržovat teplotu termostatem s přesností ± 0,2 °C. Index lomu se zpravidla měří při teplotě 20 °C nebo 25 °C. Některé typy Abbèho refraktometrů Stanovení indexu lomu Připravíme si kapátka (pipety) na nanášení kapalin pro měření. Po každém měření je nutno obě plochy hranolu očistit od předchozího vzorku (příp. nechat odpařit, pokud jsou měřené vzorky těkavé) • Změříme indexy lomu vybraných 5 – 6 čistých rozpouštědel (methanol, voda, amylalkohol, chloroform ….) • Změříme index lomu vzorku, kterým je rozpouštědlo z této skupiny, a určíme, o které rozpouštědlo se jedná 59 MĚŘENÍ pH VODNÝCH ROZTOKŮ Acidobazické vlastnosti patří mezi nejdůležitější analytické vlastnosti sloučenin a jsou široce využívány v analytické chemii. Přesné měření pH skleněnou elektrodou (potenciometrické stanovení pH) je navíc jednou ze základních operací v analytické laboratoři. Definice pH Hodnota pH je definována jako záporný dekadický logaritmus aktivity oxoniových kationtů: pH = - log[ a(H3O+ ) ] kde a(H3O+ ) označuje aktivitu oxoniových iontů. pH nabývá hodnot od 0 do 14. Chemicky čistá voda má pH = 7, kyseliny od 0 do 6, hydroxidy od 8 do 14. Ve zředěných vodných roztocích, se kterými obvykle v laboratoři pracujeme, lze hodnotu aktivity nahradit koncentrací c(H3O+ ) a pak platí: pH = - log[ c(H3O+ ) ] Ve vodném roztoku je vždy kromě přebytku molekul H2O také určité množství oxoniových kationtů H3O+ a hydroxylových aniontů OH. Součin koncentrací obou těchto iontů je ve vodných roztocích vždy konstantní, je označován jako iontový součin vody a nabývá hodnoty 10-14 mol2 /l2 (Kw = [H3O+ ] x [OH]). V čisté vodě je látková koncentrace obou iontů stejná 10-7 mol/l. To odpovídá pH = 7. Kyselost vzniká přebytkem H3O+ . Zvýšení jejich koncentrace na stonásobek, tedy na 10-5 mol/l, odpovídá pH = 5. Zásaditost znamená přebytek hydroxylových iontů na úkor oxoniových. Je-li v roztoku např. 1000x více OHnež v čisté vodě, musí klesnout koncentrace iontů H3O+ na 10-10 mol/l, což odpovídá pH = 10. Kyselost v nevodných roztocích Kyselost nevodných roztoků (např. roztoky kyselin nebo hydroxidů v alkoholech, ketonech nebo i nepolárních rozpouštědlech) popisuje hodnota tzv. Hammetovy funkce. Velikost Hammetovy funkce pro určité prostředí se prakticky zjišťuje na základě poměru kyselé a zásadité formy konkrétního acidobazického indikátoru v měřeném roztoku. Skleněná elektroda ─ vztah mezi pH a potenciálem Skleněná elektroda patří mezi membránové iontově selektivní elektrody. Je tvořena tenkou skleněnou membránou (nejčastěji kulovitého tvaru), zhotovenou ze speciálního sodno-vápenatého skla. Elektroda je naplněna tlumičem o konstantním pH, do kterého je ponořena vnitřní referentní elektroda. Nejčastěji se k tomuto účelu používá elektroda argentchloridová. Působením vody dochází k hydrolýze 60 skleněné membrány a k vzájemné výměně sodíkových iontů ze skla za vodíkové ionty z roztoku. Potenciál skleněné elektrody se řídí Nernstovou rovnicí, kterou pro případ elektrody citlivé na koncentraci oxoniových iontů lze vyjádřit zjednodušeným vztahem: 𝐸 = 𝐾 + 𝑅𝑇 𝐹 ln 𝑎 𝐻3 𝑂+ = 𝐾 − 2,303 𝑅𝑇 𝐹 𝑝𝐻 kde K je konstanta elektrody, která je závislá na složení použitého skla, resp. způsobu výroby, vnitřní náplni elektrody a použité referentní elektrodě, R je plynová konstanta (8,314 J/mol/K), T je absolutní teplota (K), F je Faradayova konstanta (96485,3 C/mol), a je aktivita iontů H3O+ (v případě zředěných roztoků se nahrazuje rovnovážnou koncentrací). Tento vztah je klíčový pro přepočet potenciálu elektrody na pH. Bylo by možné hledat konstantu K, ale ta by byla, jak je vysvětleno, pro každou konkrétní elektrodu jiná, dokonce by se lišila den ode dne pro tutéž elektrodu. Proto je praktičtější obejít hledání konstanty K kalibrací elektrody. Tímto postupem nalezneme lineární vztah mezi 2 – 3 přesně známými pH hodnotami (pufry) a potenciálem, který tyto standardy pH vyvolají. Kalibrace pH metru: Aby byla kalibrace přesná, potřebujeme alespoň dva kalibrační roztoky (pufry). Podle možností kalibrujeme přístroj tak, aby rozsah kalibrace přesahoval rozsah pH vzorků. Např. při měření v kyselé oblasti pH je běžné kalibrovat pomocí pufrů o pH 7,0 a pH 4,0, v alkalické oblasti pH pomocí pufrů o pH 7,0 a pH 10,0. pH-metr Hanna 109 - popis  displej,  regulace směrnice pH křivky (slope),  regulace úseku pH křivky (offset),  přepínač pro zobrazení hodnot pH,  přepínač pro zobrazení mV,  přepínač zobrazení teploty sondy,  kalibrace teploty (ovlivňuje směrnici),  vypnout/zapnout 61 Postup při kalibraci Pokud byly kalibrační roztoky v ledničce, necháme je vytemperovat na laboratorní teplotu! 1. Odstraníme z elektrody ochranný kryt a její povrch opláchneme důkladně destilovanou vodou. Kapičky, které zůstaly na elektrodě, opatrně otřeme savým nebo filtračním papírem. 2. Elektroda se ponoří do prvního standardního pufru (typicky pH = 7,0) a pH-metr se nastaví prvním kalibračním ovládacím prvkem  (OFFSET) tak, aby se údaj na stupnici číselně rovnal hodnotě pH pufru. 3. Před vnořením do druhého pufru elektrodu opět důkladně omyjeme destilovanou vodou a osušíme savým papírem. 4. Elektroda se ponoří do druhého standardního pufru a druhým kalibračním ovládacím prvkem  (SLOPE) se nastaví tak, aby údaj na stupnici pH-metru číselně odpovídal hodnotě pH druhého pufru. 5. Elektrodu opět několikrát opláchneme, osušíme. pH-metr Hanna 109 Grafické vysvětlení kalibrace dvěma pufry. Odezvu elektrody před kalibrací ukazuje tečkovaná závislost. Krok 1 ukazuje změnu po korekci „Offset“ na první pufr – odezva je korigovaná na čárkovanou funkci. S druhým pufrem je v kroku 2 provedena korekce směrnice („Slope“) a je získána správná odezvová funkce (plná čára). Postup měření • Nakalibrujeme pH metr na kyselou oblast (pufry pH 7 a 4) • Vzorkem je vodný roztok kyseliny octové. Změříme co nejpřesněji jeho pH a vypočítáme analytickou koncentraci této kyseliny. Pozor! Jedná se o slabou kyselinu a koncentrace H3O+ iontů přímo analytické koncentraci neodpovídá! Je nutno počítat podle rovnice disociace (disociační konstanty, pKa=4,75). 62 Identifikace opticky aktivní látky polarimetricky Některé rozpuštěné krystalické látky (a některé kapaliny) mají schopnost stáčet rovinu lineárně polarizovaného světla. Tento jev se nazývá rotační polarizace a příslušné látky se nazývají opticky aktivní. Látky, které stáčejí polarizační rovinu ve směru otáčení hodinových ručiček, když se díváme proti postupu světla, nazýváme pravotočivé; látky stáčející polarizační rovinu opačně, nazývámelevotočivé. Ukázka pravotočivé a levotočivé molekuly Vznik lineárně polarizovaného světla. Polarizátor (P) propouští pouze vertikálně polarizované vlnění, které analyzátor (A) plně propustí (horní obrázek, v okuláru světlo) anebo zcela zablokuje (dolní obrázek, v okuláru tma) Český Lékopis uvádí: Specifická optická otáčivost [𝛼] 𝐷 20 látky v roztoku je úhel otočení  roviny polarizovaného světla vyjádřený ve stupních (°) při vlnové délce D-linie sodíkového světla (= 589,3 nm) měřený při 20 °C v roztoku zkoušené látky a vypočtený pro vrstvu tloušťky 1 decimetr, obsahující 1 gram látky na mililitr. Specifická optická otáčivost pevné látky je vždy vyjádřena pro dané rozpouštědlo a pro danou koncentraci rozpuštěné látky. Každou opticky aktivní látku tedy charakterizuje fyzikální konstanta tzv. specifická otáčivost [𝛼] 𝑡 [𝛼] 𝐷 20 = 1000 ∗ 𝛼 𝑙 ∗ 𝑐 c je koncentrace látky v g/L, l je délka kyvety v dm,  je naměřený úhel otočení Hodnoty specifické otáčivosti jednotlivých opticky aktivních látek jsou tabelovány (viz. Tabulka). Ukázka specifické otáčivosti pro různé typy sacharidů D-fruktosa -91,0 - -93,5 maltosa +128,0 - + 132,0 D-galaktosa +79,0 - +81,0 rafinosa +103,0 - + 107,0 D-glukosa +52,5 - +53,3 sacharosa +66,3 - +67,0 laktosa +54,4 - +55,9 xylosa +18,5 - +19,5 (1) 63 Princip polarimetrické metody pro stanovení optické aktivity látek. Princip metody měření optické aktivity (otáčivosti) látek je ukázán na obrázku. Zdrojem světla emitujícím nepolarizované světlo vytvoříme rovinnou vlnu (rovnoběžný svazek paprsků). Po průchodu polarizátorem získáme lineárně polarizované světlo, které se šíří měřeným vzorkem. V důsledku optické aktivity látky vzorku dojde ke stočení roviny polarizace o úhel , který obecně závisí na fyzikálně-chemických vlastnostech dané látky, koncentraci měřené látky v roztoku a délce trubice s roztokem. Pro stanovení tohoto úhlu slouží tzv. analyzátor (druhý lineární polarizátor), jenž natočíme právě o úhel . Měření s kruhovým polarimetrem Vlastní měření bude prováděno na kruhovém polarimetru (Obr. 5). Zdrojem světla je sodíková výbojka o vlnové délce λ= 589,3 nm při 20 °C. Měření probíhá přímým pozorováním lidským okem. Z fyziologického hlediska je velice obtížné stanovit přesně nastavení analyzátoru tak aby osvětlení pole bylo minimální. Proto bývají polarimetry pro přímé pozorování okem zpravidla konstruovány jinak, než ukazuje obrázek. Pozorované zorné pole je rozděleno na dvě části s různou intenzitou osvětlení (polostínová metoda). Lidské oko je totiž schopno daleko lépe rozeznat rozdíl jasů dvou sousedních ploch, než maximum nebo minimum jasu plochy jediné. Otáčením analyzátoru potom měníme vzájemný poměr osvětlení v jednotlivých částech a nastavujeme tak, aby bylo osvětlení pole homogenní = šedé. Trojdílné zorné pole polarimetru s polostínovou metodou. 64 Kruhový polarimetr Po vložení zkoumaného vzorku se snažíme pomocí měrného šroubu získat v trojdílném zorném poli opět homogenní rozložení intenzity světla (obrázek b). Pootočení měrného šroubu a zároveň i analyzátoru odečítáme ze stupnice. Stupnice přístroje (obrázek) je rozdělena na 360 dílku, přičemž jeden dílek odpovídá 1°. Nonius je rozdělen do 20 dílků, přičemž jeden dílek odpovídá 0,05°. Odečítací stupnice s noniem Přesný úhel ukazuje dílek vnější stupnice, který se kryje s vnitřní stupnicí (9,30 °). Kompenzace chyby při odečítání hodnoty ze stupnice je ošetřena pomocí dvou stupnic umístěných každé na jedné straně. Získáváme tedy dvě hodnoty a výsledek zprůměrujeme. Pomůcky Kruhový polarimetr, kyvety 10/20 cm, odměrné baňky, roztoky cukrů, pipety Úkoly 1. Určete otáčivost čisté látky v roztoku 2. Měření opakujte pro různé koncentrace a zjistěte, jak je otáčivost závislá na koncentraci roztoku (zkonstruujte graf úhel otáčení vs. koncentrace) 3. Podle vypočtené specifické otáčivosti látky identifikujte neznámý cukr (viz Tabulka). 65 Pracovní postup Zapněte sodíkovou výbojku. Počkejte asi 10 minut, dokud lampa nevydává žluté světlo. Pracujte opatrně, neztraťte těsnění a nepoškoďte okénka a trubici. 1. Nařeďte zásobní roztok neznámého čistého cukru, který má koncentraci c=100 g/l na koncentraci 50 g/l (do 50 ml odměrné baňky). 2. Naplňte trubici l = 2 dm měřeným cukerným roztokem a přišroubujte boční okénka na trubici. 3. Otevřete kryt od komory pro vzorky a umístěte dovnitř trubici se zkoumaným vzorkem. V okuláru najděte krajní polohy – viz obr. a/c. Otáčejte střídavě měrným šroubem, dokud nezískáte homogenní zorné pole b. Odečtěte hodnoty na stupnici (opakujte 3x a vypočtěte průměrnou hodnotu). 4. Proveďte měření pro obě koncentrace cukerného roztoku a podle známé koncentrace a známé délky kyvety v y p o č í t e j t e p o d l e r o v n i c e ( 1 ) měrnou otáčivost roztoku [𝛼] 𝐷 20 . 5. Podle tabelovaných hodnot specifické otáčivosti z tabulky identifikujte cukr. Příklad odečítání na stupnici =16,55° Pozor! Při výpočtu specifické otáčivosti nezapomeňte počítat se skutečnou délkou kyvety (10 / 20 cm). 66 LABORATORNÍ CVIČENÍ 5. FOTOMETRIE UV-VIS FOTOMETRIE Molekuly vzorku absorbují z dopadajícího záření fotony vhodné vlnové délky λ (tj. ty, které odpovídají rozdílu jejich energetických hladin) a přecházejí do vyššího energetického stavu. V UV-VIS oblasti (190 – 900 nm) mají fotony energii dostatečnou k tomu, aby jejich absorpce způsobila přechod vnějších elektronů (200 ─ 600 kJ/mol). Skupiny, v kterých se realizuje takový elektronový přechod, se nazývají chromofory. U koordinačně kovalentních sloučenin (vazba donor-akceptor) se jedná o energetické přechody v d a f orbitalech. Některé běžné chromofory Spektrofotometrie je metoda, která umožňuje stanovit velikost absorpce záření v určitém prostředí – obvykle v kapalině. Výsledkem spektrofotometrického měření je velikost absorpce světla, která se hodnotí pomocí veličiny absorbance. Absorbance (A) je dekadický logaritmus poměru intenzity záření, které na vzorek dopadá (I0) a intenzity záření, které vzorkem prochází (I). 𝐴 = log 𝐼0 𝐼 Absorbance A se zjišťuje pomocí spektrofotometru. Protože před měřením vždy k analytu přidáváme rozpouštědla a činidla, pozorovaná absorbance je součtem absorbancí všech složek. Abychom získali absorbanci pouze analytu, je nutno absorbanci tzv. blanku (slepý vzorek) odečítat. U jednopaprskových přístrojů se to realizuje změřením spektra blanku coby prvního roztoku. Absorbance závisí přímo úměrně na koncentraci c absorbující látky s absorpčním koeficientem ε a na délce kyvety se vzorkem (d): 𝐴 = 𝜀. 𝑑. 𝑐 67 Podle druhé rovnice je zřejmé, jak se fotometrie používá pro kvantitativní chemickou analýzu, tzn. ke stanovení koncentrace c. Absorpční koeficient je pro určité absorbující prostředí charakteristický a bývá znám resp. tabelován. Častěji však, stejně jako v našem případě, se určuje pro konkrétní experimentální podmínky z kalibračních roztoků, tedy roztoků o známé koncentraci, připravených za daných experimentálních podmínek. Spektrofotometr s diodovým polem (DAD) U fotometru s diodovým polem, který se používá ve cvičení, je kyveta ozařována polychromatickým zářením. Toto záření pak dopadá na mřížku, které jej rozkládá, a v přesných pozicích dispergovaných vlnových délek jsou umístěny fotodiody. V jednom okamžiku tedy prakticky získáváme informaci o celém absorpčním spektru. Schéma fotometru s diodovým polem Fotometr HP 8453 68 ACIDOBAZICKÉ INDIKÁTORY Některé organické látky mění uspořádání dvojných vazeb v molekule v závislosti na pH prostředí, což se projeví změnou zabarvení roztoku. Takovým látkám říkáme acidobazické indikátory. Kyselost (pH) roztoku můžeme tedy sledovat vizuálně v roztocích s acidobazickým indikátorem. Používají se zejména tyto látky: Barevné přechody indikátorů jsou v praxi nejčastěji využívány pro acidobazické titrace, které slouží pro určení obsahu kyseliny nebo hydroxidu v analyzovaném vzorku. Pro hrubou orientaci o kyselosti měřeného roztoku se k měření pH používá univerzální indikátorový papírek, jehož zbarvení se mění s pH měřeného roztoku od červené až po tmavě modrou (viz barevná škála). 69 Obsluha přístroje HP8453 Nejprve zapneme fotometr a pak ovládací počítač. Vyčkáme, až systém počítače připojí fotometr (komunikační TCP/IP okno zaregistruje zařízení uv8453) a pak teprve spustíme ovládací software Chemstation. Jedná se o ovládání jednopaprskového přístroje, a proto každá série měření začíná změřením „blanku“ – obvykle rozpouštědla, ve kterém se bude provádět následující měření analytu (Tlačítko BLANK). Pak už lze měřit libovolný počet vzorků (SAMPLE). Pokud některé naměřené spektrum nevyhovuje, po označení (klepnutím myši) jej lze odstranit (DELETE). Software Chemstation, modul UV-VIS Obsluha je velmi jednoduchá a umožňuje přehledně srovnávat více spekter, odečítat hodnoty maxim i absorbancí (pravé tlačítko myši). Zapisujme do tabulky maximum informací o příslušném vzorku kvůli pozdější orientaci. Budeme pracovat v modu Standard. Můžeme exportovat spektrální data do excelovského sešitu a detailně je zpracovat doma na počítači při vypracovávání protokolu. Příklad spekter nasnímaných softwarem Chemstation 70 VYUŽITÍ FOTOMETRIE KE KVALITATIVNÍ ANALÝZE. CHARAKTERISTIKY A ZMĚNY ABSORPČNÍCH SPEKTER Vybavení Jednopaprskový fotometr HP8453 6x25 ml odměrných baněk Chemikálie Karboxylové kyseliny: kávová, p-kumarová, skořicová, gallová, benzoová. Methyloranž nebo fenolftalein (nebo jiný roztok indikátoru) ethanol nebo methanol Úkoly a) nasnímat UV-VIS spektra několika vybraných karboxylových kyselin a vyhodnotit je – tzn. popsat maxima a minima. Na základě tohoto popisu pak identifikovat spektrum neznámé kyseliny patřící do tohoto souboru b) popsat změnu absorpčního spektra vybraného acidobazického indikátoru při změně pH a srovnat tuto změnu s vizuálním vjemem Postup 1/ Kvalitativní analýza UV-VIS spekter • Nastavíme parametry měření: rozsah 210 ─ 410 nm • Připravíme roztoky standardů vhodné koncentrace (c = 20 mg/l) • Změříme blank • Změříme postupně všechny standardy a odečteme charakteristiky spektra (intenzita absorpčního maxima, vlnová délka maxima) • Změříme spektrum vzorku 2/ Změna UV-VIS spektra acidobazického indikátoru • Nastavíme parametry měření: rozsah 210 – 610 nm • Připravíme roztok vybraného indikátoru. Vhodnou koncentraci určíme zkusmo (postupným ředěním) podle velikosti maximální absorbance (A < 2) • Změříme (upravíme) pH a změříme absorpční spektrum • Upravíme pH, aby došlo k viditelné změně barvy, pH změříme a opět sejmeme spektrum 71 Vyhodnocení • Porovnáním spektra vzorku se spektry standardů (podle hodnot absorpčních maxim, minim) určíme vzorek. Vypočítáme molární absorpční koeficient ve vybraném absorpčním maximu (podle známé koncentrace, tloušťky kyvety a změřené absorbance). • U spektra vzorku karboxylové kyseliny zkonstruujeme derivační spektrum 1. řádu (A/ vs.  nejlépe v MS Excelu). Porovnáním s původním spektrem zjistíme výhody derivačního spektra. • Popíšeme barevnou změnu indikátoru změnou (posunem) absorpčních maxim. Uvedeme vzorec indikátoru v obou barevných formách a oblast jeho použití. Protokol Nejlépe je exportovat spektrální data do excelovského sešitu a odevzdat je v grafické formě jako součást protokolu. Pozn.: I fotometr je přístroj, jehož stupnici je občas nutno zkontrolovat (kalibrovat); ČL předepisuje postup v kapitole 2.2.25. V rámci cvičení lze tuto kalibraci provádět. Smysl derivace absorpčních spekter – nulové hodnoty první derivace ukazují maxima a minima původního spektra 72 LABORATORNÍ CVIČENÍ 6. INFRAČERVENÁ SPEKTROMETRIE ÚVOD – INFRAČERVENÁ SPEKTROMETRIE IČ spektrometrie patří mezi fotometrické techniky čili využívá interakce mezi elektromagnetickým zářením a hmotou. Každé elektromagnetické záření můžeme současně považovat za proud částic (fotonů) i za vlnění (dualita). Elektromagnetické záření lze charakterizovat rychlostí c, vlnovou délkou λ, kmitočtem (frekvencí) ν [Hz], vlnočtem υ [cm-1 ] a energií E, mezi nimiž platí vztahy: h – Planckova konstanta. Vlnové délky, resp. frekvence jednotlivých částí elektromagnetického spektra. IČ oblast je rozdělena na tři části: Vzdálenou IČ oblast 200 – 5 cm−1 (50 – 1000 μm), (Far-Infrared, FIR) Střední IČ oblast 4000 – 200 cm−1 (2,50 – 50 μm), (Middle-Infrared, MIR) Blízkou IČ oblast 12 800 – 4 000 cm−1 (0,78 – 2,50 μm), (Near-Infrared, NIR) IČ záření v oblasti FIR má nejnižší energii, která vyvolává změny rotační energie molekuly. FIR je tedy především oblastí rotačních spekter a má význam zejména pro teoretickou chemii a molekulovou fyziku. Fotony v NIR oblasti mají nejvyšší energii, a proto mohou molekuly vibračně excitovat i do vyšších vybuzených vibračních stavů, než je první, tj. do druhého, třetího a dalších. Těmto přechodům říkáme svrchní tóny neboli overtony. NIR spektrometrie velký analytický význam, zejména v oblasti kvalitativní a kvantitativní analýzy. Oblast MIR je z hlediska analytických aplikací nejdůležitější. Je to oblast, kde leží většina tzv. fundamentálních vibrací, tj. vibračních přechodů ze základního do prvního vzbuzeného vibračního stavu. Těžiště analytických aplikací metod v MIR oblasti leží ve strukturní diagnostice, charakterizaci a identifikaci organických látek, což je téma této úlohy.   hc hE ==   1 =   c = 73 Nutná podmínka pro absorpci IČ záření Vibrační pohyb molekul si z pohledu klasické fyziky můžeme představit jako periodickou změnu vzdálenosti mezi vazebnými atomy a míra absorpce infračerveného záření je určena změnou dipólového momentu molekuly. Dipólový moment je vektorová veličina popisující rozdělení elektrického náboje v molekule a má úzký vztah k chemické vazbě – jde o rozložení elektronů (přebytek vytvoří částečný negativní náboj, jejich nedostatek částečný pozitivní náboj). U symetrických molekul se může stát, že některá vibrace není v IČ spektru aktivní, tj. neprojeví se ve spektru odpovídajícím absorpčním pásem. Molekula sama o sobě ale permanentní dipól mít nemusí, je nutná jeho změna (změna vibračního stavu). Vibrace skupiny nebo vazby jsou ovlivňovány pouze v malé míře ostatními atomy (skupinami) v molekule. Proto se poloha absorpčních pásů a jejich intenzita, kterými se funkční skupina (resp. vazba molekuly) projeví v infračerveném spektru, v různých molekulách příliš neliší. Tato skutečnost umožnila na základě empirických zkušeností sestavit tabulky vlnočtů charakteristických vibrací důležitých skupin a vazeb. Tyto tabulky se používají pro identifikační účely – viz tabulka na konci úlohy. Experimentální uspořádání MIR spektrometrie Všechny optické prvky přístroje musí být z IČ transparentního materiálu, a tak se používá zejména halogenidů alkalických kovů a kovů alkalických zemin (KBr, NaCl, ZnSe). Na obrázku níže je znázorněno obecné konstrukční schéma spektrometrů s Fourierovou transformací, které se dnes téměř výhradně používají. Všechny spektrometry se skládají ze tří základních součástí: • zdroje záření • detektoru • interferometru Základní konstrukční schéma spektrometrů s Fourierovou transformací. (Upraveno dle Základy FT-NIR spektrometrie. Nicolet CZ, 2008) detektor zdroj IČ záření pevné zrcadlo x 0 -x dělič paprsků (beamsplitter) laserová dioda He-Ne laser vzorek pohyblivé zrcadlo 74 Jako zdroj záření se v MIR spektrometrii používá karbidu křemíku, příp. odporové vlákno NiCr, v obou případech žhavené na vysokou teplotu. V IČ systémech se využívá dvou základních systémů detekce – termálního a kvantového. V MIR spektrometrii může být příkladem termálního např. deuterovaný triglycin síran (DTGS) detektor a příkladem kvantového je např. tellurid kademnato-rtuťný (HCT) detektor. Nejdůležitější optickou součástí je tzv. interferometr. Dříve se užívalo, a v některých speciálních aplikacích se ještě stále využívá, disperzních systémů, kde se k oddělení paprsků používalo disperzního prvku (hranol, mřížka). Dnes se pro běžné aplikace používá interferometrických systémů s Fourierovu transformaci (FT). Princip interferometrie lze jednoduše vysvětlit pro případ, kdy máme pouze jednu vlnu, která je registrována na detektoru jako sinusová funkce. Tato jednoduchá funkce se používá pro sledování a kalibraci polohy a pohybu zrcadel HeNe laserem. Vysoce intenzivní záření postupuje do interferometru. Interferometr se skládá z děliče paprsků, který polovinu toku záření odráží na fixní zrcadlo a polovinu propustí na pohyblivé zrcadlo. Pohyblivé zrcadlo toto záření odrazí zpět, přičemž záření urazí optickou dráhu odlišnou od dráhy záření odraženého od fixního zrcadla. Když se tyto paprsky zpět rekombinují na děliči paprsků a vzdálenost fixního a pohyblivého zrcadla je přesně stejná, dojde ke konstruktivní interferenci (zesílení), tedy bude vysoká odezva na detektoru. Budou-li zrcadla nestejně vzdálena, budou při návratu na dělič paprsků vlny destruktivně interferovat (zeslabovat). Proto bude i nižší odezva na detektoru. MIR spektrum pozadí vzduchu: ve spektru jsou zřejmé celkem čtyři oblasti výrazných absorpcí (jedná se o transmisní měření a oblast absorpce tedy při měření pozadí znamená snížení intenzity signálu dopadajícího na detektor). Oblasti 1 a 2 lze přiřadit vibracím molekul vzdušné vlhkosti (valenčním a deformačním, vlnočet 1559 cm-1 se dá použít pro stanovení vzdušné vlhkosti) a oblasti 3 a 4 přísluší valenčním, resp. deformačním vibracím oxidu uhličitého. 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 SingleBeam 5001000150020002500300035004000 Wavenumber (cm-1 ) 1 3 2 4 75 Prochází-li homogenním prostředím definované záření, zeslabuje se jeho počáteční intenzita o podíl, který je tímto prostředím absorbován. Absorpcí se tedy snižuje intenzita záření, ale jeho vlnová délka, resp. vlnočet se nemění. Při průchodu světelného paprsku o intenzitě I0 vrstvou absorbujícího prostředí se část absorbuje a část o intenzitě I vychází. Platí následující vztahy: T je transmitance, A je absorbance, 100*T je propustnost [%]. Pro reflexní měření se mnohdy používá reflektance R [%], která je definovaná jako tok reflektovaného (odraženého) záření ΦR vůči toku vstupního záření Φ0. Reflektance se pak formálně převádí na absorbanci A* pomocí vztahu: R A 1 log* = Techniky měření MIR spekter IČ spektra ve střední oblasti lze měřit jako zeslabení zářivého toku po průchodu vzorkem (transmisní měření) nebo po odrazu záření (reflexní měření). Transmisní měření se využívá pro měření plynů, kapalin, průsvitných folií nebo pevných látek. Kapalné vzorky je nutno měřit ve speciálních kyvetách, které jsou zhotoveny např. z KBr, NaCl, CaF2, BaF2, ZnSe, CsI, AgCl, AgBr, Ge, křemíku nebo směsného krystalu jodidu a bromidu thallného (KRS- 5). Je potřeba zvážit, jaká rozpouštědla budou pro analýzu použita, protože výše uvedené materiály kyvet mají v různých rozpouštědlech různou rozpustnost. Samozřejmě nelze použít okénka kyvet z materiálu, který není použitému rozpouštědlu dostatečně odolný – proto prakticky vylučujeme použití vody s KBr. Rozpouštědla jsou používána velmi rozmanitá, nejčastěji se používají halogenovaná rozpouštědla (např. tetrachlormethan, chloroform) nebo sirouhlík vzhledem k malému počtu charakteristických pásů, které ve spektru poskytují. Pro měření vzorků v pevném stavu se připravuje suspenze v parafinovém oleji nebo tableta vzniklá přímo lisováním vzorku s KBr. Reflexní měření, která jsou v současnosti v praxi nejvíce rozšířená, využívají nejčastěji tzv. techniky ATR. Při uspořádání tohoto experimentu je tenká vrstva vzorku přitlačena na krystal vyrobený nejčastěji ze ZnSe, Ge, Si nebo diamantu. IČ záření je v krystalu odráženo ke vzorku, kde dojde k incidenci s tenkou (1 μm) vrstvou vzorku a je odráženo zpět na krystal, kde 0  = R R 76 se láme a optickou soustavou pokračuje k detektoru. Lom na krystalu může být násobný nebo pouze jeden, viz obrázek. Technikou ATR lze měřit jak pevné vzorky, tak kapaliny, resp. různé polotuhé materiály. Je však nutno zdůraznit, že zatímco transmisní technikou se získává IČ spektrum vzorku „průměrného“, pomocí ATR techniky získáme spektrum „aktuálního“ vzorku (konkrétní plochy, která je přitlačena ke krystalu). Oproti transmisním spektrům dochází při použití techniky ATR ke zvýraznění intenzity pásů v oblasti nízkých vlnočtů vůči pásům při vyšších vlnočtech. Proto jsou často spektra získaná ATR technikou matematicky korigována, aby se přiblížila transmisním spektrům. Schéma měření absorpce IČ záření na ATR krystalu Materiály použité pro výrobu optických prvků IČ spektrometrů Materiály použité pro výrobu optických prvků IČ spektrometrů jsou značně hygroskopické. Z toho důvodu je nezbytné udržovat IČ spektrometr stále pod napětím, aby byl prostor nepřetržitě vyhříván a nedocházelo ke kondenzaci vodních par na optických prvcích. Mimoto voda silně absorbuje IČ záření, čímž je omezeno použití IČ spektrometrie pro měření vzorků obsahujících vysoké množství vody. Z toho plyne i nutnost měřit před analýzou vzorku tzv. pozadí (background), aby byl eliminován vliv molekul ve vzduchu, které poskytují odezvu na IČ detektoru (vzdušná vlhkost, oxid uhličitý atd.). 77 Obsluha FT-IR spektrometru Nicolet Impact 410 Pokud se bude měřit vzorek v KBr tabletě, je třeba do kyvetového prostoru vložit základní desku s držákem pro tyto vzorky v transmisním modu. Před měřením reflexních ATR spekter je třeba vložit do kyvetového prostoru desku, na níž je upevněn ATR nástavec. Zapněte tlačítkem počítač a vyčkejte na spuštění Windows. Poté dvojklikněte na ploše na ikonu zástupce OMNIC. Po vložení konkrétního nástavce se v řádku „Experiment“ objeví typ a název konkrétního experimentu. Pro veškerá transmisní měření (folie, KBr tablety) použijete experiment nazvaný „KBr“. Pro veškerá měření ATR technikou nastavíte experiment nazvaný „ATR“. Před vlastním měřením je třeba proměřit spektrum pozadí. Kliknete na ikonu „Collect Bkg“ a potvrdíte, že je možno měřit spektrum pozadí. uložíte do složky. Spektrum pozadí je také uloženo v paměti přístroje a bude sloužit pro srovnávání s jednopaprskovými spektry následně měřených vzorků. Vlastní měření spektra vzorku probíhá následovně: • do kyvetového prostoru vložíte vzorek, klikněte na „Collect Smp“. • Objeví se měřicí okno, ve kterém se zobrazuje vždy právě měřené spektrum během jednoho skenu a skenování probíhá opakovaně bez akumulace. Zde provedete kontrolu, zda spektrum vzorku odpovídá požadavkům na něj kladeným (pokud jsou hodnoty transmitance příliš nízké nebo vysoké či nějak tvary pásů deformované), je třeba připravit vzorek nový nebo ATR krystal očistit a osušit. • Pokud spektrum vyhovuje, vlastní měření spustíte kliknutím na tlačítko „Start Collection“. • Po dokončení měření přidáte spektrum do základního okna. Ihned po přidání naměřeného spektra do základního okna, toto spektrum uložíte do složky pomocí ikony „Save/Save as“. • Pro manipulaci se spektry zobrazenými v okně slouží řádka zobrazená pod spektrálním oknem. V základním režimu je aktivní ikona se šipkou v řádku pod spektrem. Pokud chceme odečítat hodnoty transmitancí a vlnočtů na aktivním spektru (zobrazeno červeně). Veškerá zpracovaná spektra v programu Omnic uložte resp. exportujte také do grafického formátu (WMF nebo TIFF), který použijete v protokolu. PŘINESTE SI USB FLASH DISK, abyste si tato spektra mohli uložit! 78 IDENTIFIKACE ORGANICKÝCH SLOUČENIN INFRAČERVENOU SPEKTROMETRIÍ Úkol Změřte infračervená spektra zadaných standardů a vzorků, a to jednak v KBr tabletě, jednak ATR technikou. Na základě analýzy infračervených spekter vzorků určete, o jaké typy látek se jedná, jaké obsahují funkční skupiny a jakou mají pravděpodobnou strukturu. Na základě porovnání s knihovnou spekter určete vzorek. Postup Vzorky studovaných látek jsou upraveny do vhodné formy (KBr tablety, tenké vrstvy apod.). Je proměřeno pozadí vzorku, tzn. tableta z čistého KBr, rozpouštědlo, vzduch… a následně vlastní vzorek v dané formě a prostředí. Získané IČ spektrum je graf závislosti transmitance nebo absorbance na vlnočtu. Látky se identifikují pomocí charakteristických pásů, tedy přiřazením analyzované látky do skupiny: aromatické/alifatické, ketony, kyseliny, halogenované sloučeniny, aminy, atd. Pro přesné určení je třeba srovnání spektra analyzované látky se spektrem referenčních látek. Chemikálie bromid draselný, ethanol, tenká folie PE, PVC, folie PS pro kalibraci, standardy dle výběru vyučujícího + vzorek Pomůcky FT-IR spektrometr Nicolet Impact 410 s příslušenstvím, lis na výrobu KBr tablet, třecí miska s třenkou, špachtlička, analytické váhy Příprava KBr tablet KBr usušený v sušárně při 120 ─ 130C. Odvážený (cca 0,1 ─ 0,2 mg) sypký vzorek se smísí s vysušeným KBr (400 – 500 mg; uvedená množství jsou individuální, záleží na absorpčním koeficientu vzorku). Směs je nutno homogenizovat. To provedete pečlivým roztíráním v třecí misce. 79 Do ocelové raznice vložíte ocelový kotouček hladkou stranou vzhůru. Na tuto lesklou plochu nasypete rovnoměrně homogenizovaný KBr se vzorkem. Na tuto vrstvu položíte druhý ocelový kotouček, opět hladkou stranou k prášku. Na chvíli připojíte vakuum. • Raznici umístíte do lisu a ručně přitáhnete až na doraz. Zaaretujte lis • Lis natlakujte na 40 kN a vyčkáte asi 10 s (viz obrázek) • Dotlakujte na 80 ─ 90 kN, tedy na začátek červeně označené stupnice. Vyčkáte asi 20 s • Uvolníte lis - odaretujte ho (viz obrázek) • Uvolněte raznici z lisu pomocí horního šroubu. Tabletu z raznice uvolníte pomocí nástavce a uložíte do exsikátoru nebo umístíte přímo do držáku přístroje Příprava ostatních vzorků k měření Pro měření tablet využijete základní nástavec pro transmisní měření. Pro měření ATR technikou je třeba docílit maximálního kontaktu vzorku s krystalem. Lze měřit i kapalné vzorky. Prakticky to vždy znamená dokonalé odmaštění a osušení povrchu ATR krystalu, Postup Transmisní mód – tablety • Připravíte tabletu z čistého KBr (blank) a další tablety KBr s naváženými vzorky a uložíte do exsikátoru 80 • Zkontrolujete, zda je v přístroji základní držák pro měření v transmisním modu a zkontrolujte základní nastavení experimentu • Změřte spektrum pozadí • Změříte spektrum připravené KBr tablety jako pozadí • Postupně změříte spektra připravených tablet KBr se vzorky ATR měření – krystal • Vyměníte základní nástavec pro měření v transmisním modu za ATR nástavec a zvolíte experiment nazvaný „ATR“ • Zkontrolujte, zda je ATR krystal čistý a suchý a změřte následně pozadí • Změřte všechny vzorky technikou ATR. Mezi jednotlivými vzorky vždy pečlivě očistěte ATR krystal • Porovnejte spektra jednotlivých látek získaných pomocí KBr tablet a ATR technikou. Na základě analýzy infračervených spekter vzorků určete, o jaké typy látek se jedná, jaké obsahují funkční skupiny, jakou mají pravděpodobnou strukturu, a na základě porovnání s vytvořenou knihovnou spekter určíte, jakou konkrétní látku váš vzorek obsahuje 81 • Vytiskněte IČ spektra s úplným popisem – jsou součástí protokolu, který vypracujete a výsledky konzultujte s vyučujícím • Uzavřete program Omnic a po dohodě s vyučujícím vypnete počítač. Přístroj Nicolet nevypínáme! Vyhodnocení Spektra změřená na cvičení včetně neznámých vzorků budou popsána pomocí níže uvedených tabulek. Budete postupovat v tabulkách od nejvyšších vlnočtů a určovat charakteristické pásy jednotlivých funkčních skupin studovaných látek. Přítomnost dané funkční skupiny ve vzorku je třeba doložit identifikací všech příslušných pásů v daném IČ spektru. U neznámého vzorku je třeba určit, o jakou látku se jedná porovnáním se standardy v knihovně spekter nebo alespoň do které skupiny náleží. Standardní spektrum polystyrénu vhodné pro kalibraci přístroje (ČL2009) Vlnočty (cm-1 ): 3026, 2925, 2849, 1943, 1870, 1802, 1601, 1583, 1181, 1155, 1069, 1028, 907, 701. 82 ZJEDNODUŠENÁ TABULKA CHARAKTERISTICKÝCH VIBRACÍ 83 Literatura o infračervené spektrometrii Böhm S., Smrčková-Voltrová S. Strukturní analýza organických sloučenin. Fakulta chemicko-inženýrská, Vysoká škola chemicko-technologická v Praze, Praha, 1995. Socrates G. Infrared and Raman Characteristic Group Frequencies. John Wiley & Sons, Chichester, UK, 2001. Matějka, P. Infračervená spektroskopie. In: Návody pro laboratorní cvičení z analytické chemie II. J. Krofta (Ed.). Fakulta chemicko-inženýrská, Vysoká škola chemicko-technologická v Praze, Praha, 2001, pp. 11-15. Pekárek, T.; Jampílek, J. Infračervená a Ramanova spektrometrie. In: Moderní přístupy k farmaceutické analýze. J. Dohnal, J. Jampílek, V. Král, A. Řezáčová (Eds.). Farmaceutická fakulta, Veterinární a farmaceutická univerzita Brno, Praha, 2010, pp. 222-260. 84 ZDROJE A DOPORUČENÁ LITERATURA I. Liška, J. Jampílek, R. Opatřilová, Návody do cvičení z analytické chemie. Kvalitativní anorganická analýza, VFU Brno, 2008 Svobodová a kolektiv, Návody do cvičení z analytické chemie pro posluchače farmacie - II., Univerzita Karlova v Praze, 1987 R. Karlíček a kolektiv, Analytická chemie pro farmaceuty, UK Praha, 2005. J. Šenkýř, P. Lubal, Vybrané postupy pro základní cvičení z analytické chemie, Kvalitativní a kvantitativní analýza, Masarykova univerzita, Brno, 2004 Český lékopis, 2009 Návod k pH metru Hanna 109, www.hanna-instruments.cz http://www.ped.muni.cz/wchem/chemicke_didakticke_hry/pexeso- laboratorni%20pomucky.htm http://www.public.asu.edu/~jpbirk/qual/qualanal/confirm.htm http://anl.zshk.cz/vyuka/analyza-kationtu.aspx http://anl.zshk.cz/vyuka/dukazy-funkcnich-skupin.aspx