Experimentální modely ekotoxicity pro bezobratlé živočichy Bezobratlí živočichové • Přítomnost a aktivita bezobratlých je naprosto rozhodující pro stav ekosystému. • Bezobratlé najdeme ve všech ekosystémech. • Bezobratlí tvoří významnou část celkové biomasy v terestrických i akvatických ekosystémech, mají nepoměrně vyšší druhovou bohatost oproti obratlovcům. • Hrají významnou roli v potravním řetězci jako destruenti, ale i konzumenti prvního a druhého řádu, s čímž je spojená možná bioakumulace. • Díky změnám habitatu při metamorfóze mohou zasahovat do více ekosystémů i během jednoho životního cyklu, díky čemuž mohou přijímat široké spektrum polutantů a přenášet je mezi jednotlivými ekosystémy. Testy ekotoxicity v půdě hlístice Půdní testy s bezobratlými Uspořádání: umělý substrát, vlhčená petriho miska, standardní nebo přírodní půda - různé nádoby... - zpravidla 14 dní (letalita), 56 dní - reprodukce ... roupice Organismy Kroužkovci - žížaly, háďátka, roupice Hmyz - Chvostoskoci (Collembola) zízaly chvostoskoci f'SŕT l-*í&ř*! TERESTRICKÉ PROSTREDI - konzumenti - bezobratlí Zejména pro testování biocidů VČELY - testování insekticidů - dávkování v potravě Moucha domácí ESI: Unlvtrítiy »rNtbr»Ka Qtjuilnittti tf Entomology Drosophila (hodnocení genotoxicity) ;/ Testy s vodními bezobratlými Stanovení akutní či prolongované toxicity: chemických látek, výluhů z pevných matríc průmyslových či komunálních odpadních vod povrchových nebo podzemních vod Table 1, Off^PMVI-JNii scientific namts nfimyGT'tcbrtltt& Ľíŕrf farGťdiŕť toxicity íŕJŕj'nf.1 llrrlŕr frfiiii. jnri «par i no OoHnHním nimi Anualr&ci lairj1 ahrimpi Strwp ro i -ff. ji u i u.% f i ■ 11 i ľ CUACOTft DajrfiniťL ítn^vcjřOiřťLř» air' uíuilaa {)apÍ\nÍQ nwjipm ftrpJinia JHJÍC.T Ctolrnroda 5«d shriirpn fypri/lnptii uut\rf ľíwpfldn ftůwhup .4yeŕUí-? ŕ"*LJn]Ľdij5 Amphj[fOdz Scuis ír'n T] TlCrt J DJÍ Ľff]piiinHdÍlKK Om-'H TIÜTVP !í!i i .' ■■ ^'H^Tnanií /ukmJ\uj( Ľfce&poda tfrranccrŕj juií CrniTisb JtTCUJnŮťLTLjJC f p Croytinb J'ji'ťl-i Ml- -ri '-ľv- ttnfi. :ili .■ ■ . Glissfllirirnn t_ya ■í.-uiii'iiTi'jiliVi ^cron*ü™i*fi. íľlfliU flůlUff .H n (hm ti« Jt^pi/lů Ůp. Elŕhŕrrtťrur^frn /ÍMfl^ícni'a At Ediuatd ÜdcfiDly fsľ.Ajliinri nfvutofa Tricboptů« ■F/yuJi-fl^fycn.f up. ■■■■■■■■,■ Á -." ;.: ip. DijUern TSpuJa sp. ťľAuu ůunu ^j|> ŕ'f »ILcjkku.v: pp. CAthi^y^aj JpÍĽf/TWJIlíf A rímr uúsi'tfdJla SLonflíbw Mojíftiťs DniifDiillifiF. D*mp*lfly Darcuttlíly Cnn? flics rhnoLorujnlfl^Pí ladu Snipe Fly 'ľhí following Ute aLigfiflí JTiv^rtíbTůfeů were luted: cLaph-HHÍ5-ÍUutunuEarLTJ>El?h-«(TLy Iflůtdr: utonjefly-Eirsí ynu ílůis íl-30 nunlutígl, Mťond ygar clů*4 (20-40 mm kngl; uicl mjra(pp-f«irth Lnaur. All uthůr Jrevertehrojlti wtrn rk*]g. ha [cd Ai nidfld, juvenil*, <* tobHutil Testy toxicity na vodních bezobratlích Normy testů na bezoobratlých: ČSN EN ISO, OECD, ASTM, US EPA, TNV, EEC, AFNOR Testy na korýších (Crustacea) -planktonni- nejčastější Daphnia magna, D. pulex, Ceriodaphnia dubia, Artemia šalina (mořská), Thamnocephalus platyurus Testy na vířnících (Rotifera) - Brachionus calyciflorus Testy na kroužkovcích (Annelida) - Tubifex tubifex Testy na hmyzu (Insecta) - Chironomus tentans Testy na měkkýších (Mollusca) Potamopyrgus antipodarum Testy na bentických korýších (Crustacea) Gammarus, Hyallela azteca Daphnia magna Ceriodaphnia dubia Gammarus Artemia šalina Hrotnatka velká {Daphnia magna) Říše Animalia (živočichové) - kmen Arthropoda (členovci) - podkmen Crustacea (korýši) - třída Branchiopoda (lupenonožci) - řád Cladocera (perloočky) - čeleď Daphniidae (hrotnatkovití) - rod Daphnia (hrotnatka) Daphnia pulex (hrotnatka obecná), D. magna (h. velká) • zástupce zooplanktonu • akutní i chronické testy • běžně používaný modelový organismus (OECD 1984) _ citlivost k toxikantům - rychlá reprodukce - determinované toxikologické parametry - rychlý životní cyklus -snadná kultivace - biochemické markery Normy testů s Daphnia magna • ČSN ISO 6341 (75 7751) Jakost vod - Zkouška inhibice pohyblivosti Daphnia magna Straus (Cladocera, Crustacea) - Zkouška akutní toxicity • ČSN ISO 10706 (75 7752) Jakost vod - Stanovení chronické toxicity látek pro daphnia magna Straus (Cladocera, Crustacea) • ISO 6341/1996 Water quality - Determination of the inhibition of the mobility of Daphnia magna Straus (Cladocera, Crustacea) - Acute toxicity test • ISO 1070/2000 Water quality - Determination of long term toxicity of substances to Daphnia magna Straus (Cladocera, Crustacea) • OECD 202 Daphnia sp. Acute Immobilisation Test (Updated Guideline, adopted 4th April 1984) • OECD 211 Daphnia magna Reproduction Test (Original Guideline, adopted 21st September 1998) Permanentní laboratorní chov Daphnia magna • kultivační místnost • stálá teplota 20 ± 2°C • stálá fotoperioda 16h světla/8h tmy • stálé pH • kultivační médium M4 • pravidelné krmení směsí řas 3-5 mm dlouhý, převážně planktonický sladkovodní živočich dospívají během 6-10 dní, množí se partenogeneticky, životnost až 56 dní při 20°C Akutní test na Daphnia magna Cíl: určení počáteční koncentrace, která v testu imobilizuje 50% jedinců Daphnia magna Podmínky akutního testu: • jedinci mladší 24 hodin, získaní partenogenezí • expozice 24/48 h, bez aerace, bez krmení, bez úpravy pH • standardní médium (CaC03, MgS04, NaHC03, KCl) • bez osvětlení nebo 16 h světla / 8 h tmy, teplota 20°C±2 °C • pH 6-9 (změna během testu max.± 1,5) • během testu měříme pH, teplotu, 02 • rozpuštěný kyslík > 2mg/l / > 3 mg/l • referenční látka:dichroman draselný Zpracování a příprava vzorků vody • Láhve se naplní vzorkem, aby se zamezilo přístupu vzduchu. • Zkouška toxicity se provede co nejdříve po odběru, nejpozději do 6 hod. Pokud není možné tento interval dodržet, vzorek se na místě odběru zchladí na +4°C [nebo zmrazi na -20°C]. V tomto případě musí být vzorek zpracován do 48 hod. KV •y r i Vlastní zkouška: Nejméně: 20 jedinců na koncentraci (4x5ml/5ks), 5 organismů na jamku či nádobku • nádobka 5-10ml/ks (30 jamková destička (10 ml)) - 2 ml testovaného roztoku na jedince po 5 jedincích do každé jamky nejméně 20 jedinců A ředící jamka testovací jamky Zkoušené roztoky: min. 5 koncentrací + kontrola (testovaná látka + ředící médium) Sledovaný parametr: imobilizace po 24, 48 hodinách - počítáme mobilní jedince - kriterium imobilizace: jedince, kteří nejsou schopni se rozplavat ani po 15s mírném zamíchání považujeme za imobilizované, i kdyby ještě pohybovali tykadly Platnost výsledků = validita testu Koncentrace rozpuštěného kyslíku na konci zkoušky je větší anebo se rovná 2 mg.l" Procento imobilizace kontrolních vzorkuje menší než nebo se rovná 10% 24h-EC50i pro dichroman draselný je v rozsahu od 0,6 do 1,7 mg.1-1 Vyjadřování výsledků Hodnocení: Počet imobilních jedinců počáteční inhibiční koncentrace - hodnoty EC50 (pro 24h a 48h) popř. nejnižší c pro 100% imobilizaci a nejvyšší c pro 0% imobilizaci Hodnoty 24h-EC50i, 48h-EC50i a limity odpovídající 0% a 100% imobilizace se vyjadřují: U odpadních vod v procentech ředění U chemických látek v miligramech na litr ALTERNATIVNÍ MIKROBIOTESTY ("toxkitv") s bezobratlími www. microbiotests. be "Test organisms are included in the kits as "dormant eggs (cysts) " which can be hatched "on demand' ROTOXKIT F citvottic Contains all the materials to perform three 48h reproduction assays THAMNOTOXKIT F™ MICROBIOTESTS With the crustacean Thamnoceph altts platyurus PROTOXKIT F™ MICROBIOTESTS With the ciliate protozoan Tetrahymena thermophila MIKROBIOTESTY http://www.microbiotests.be/ • Výhody: miniaturizace, zkrácení doby inkubace a tím i zjednodušení • Možnost dlouhodobého uchovávání testovacích organizmů ve formě kryptobiotických klidových stádií, v lyofilizováném nebo imobilizováném stavu. • Organizmy se před použitím v testech uvedou do aktivního stavu. • Synchronně vy líhli j edinci j sou uniformní a pocházej í z geneticky přesně definovaných zásobních kultur. • V současnosti jsou mikrobiotesty komerčně dostupné v podobě tzv. toxkitů MIKROBIOTESTY DAPHTOXKIT FTM magna, DAPHTOXKIT FTM pulex: 24-48h test akutní toxicity pro korýše Daphnia magna a Daphnia pulex fbdpovídá OECD a ISO normám) CERIODAPHTOXKIT FTM: 24 h test akutní toxicity pro korýše Ceriodaphnia dubia (odpovídá USEPA normě) THAMNOTOXKIT FTM: 24 h test akutní toxicity pro korýše Thamnocephalus platyurus (Test s Thamnocephalem u nás normován TNO) OSTRACODTOXKIT FTM: 6 denní chronický test toxicity (mortalita/inhibice růstu) s korýšem Heterocypris incongruens. První kontaktní mikrobiotest pro kontaminované sedimenty nebo půdy ROTOXKIT FTM: 24 h test akutní toxicity pro vířníka Brachionus calyciflorus (odpovídá standardní normě ASTM E1440-91). ROTOXKIT FTMshort -chronic: 48h krátký-chronický (reprodukční) test s vířníkem Brachionus calyciflorus (odpovídá francouzské normě AFNOR) PROTOXKIT FTM: 24h chronický (inhibice růstu) test toxicity pro prvoka Tetrahymena thermophila. Metodika pro odpovídající test je vyvíjena v OECD. RAPIDTOXKIT (tm): Hodinový test toxicity s larvami korýše Thamnocephalus platyurus pro rychlou detekci kontaminace vody. Mikrobiotesty Thamnotoxkit • Testovací organismus Thamnocephalus platyurus • Uchovávání: klidová stádia • Doba líhnutí: 20 hod., 4000 lx, 20°C • Inkubace: 24 hod., 4000 lx, 20°C • Vyhodnocení: mortalita, 24 LC50 Výhody: 20 h líhnutí, větší, citlivý organismus, expozice 24-48 h, srovnatelné výsledky s dafnií (+ citlivější) i zakalené/zabarvené vzorky, jev TNV Obdobně CERTODAPHTOX Ceriodaphnia dubia ODVETVOVÁ TECHNICKÁ NORMA VODNÍHO HOSPODÁŘSTVÍ MZeČR MIKROMETODA STANOVENÍ AKUTNÍ TOXICITY NA KORÝŠI THAMNOCEPHALUS PLATYURUS TNV 75 7754 Obsah Strana 1. Předmluva....................................................................................................... 1 2. Predmet normy.................................................................................................. 2 3. Termíny, definice a zkratky................................................................................. 2 4. Podstata zkoušky............................................................................................... 3 5. Materiály a chemikálie......................................................................................... 3 6. Prístroje a pomůcky............................................................................................ 4 7. Príprava vzorků zkoušené vody........................................................................... 4 8. Postup zkoušky.................................................................................................... 5 9. Vyjadřování výsledků............................................................................................ 7 10. Protokol o zkoušce............................................................................................... 7 11. Příloha A (informativní) - Korýš Thamnocephalus platyurus.................................. 8 12. Přílohy B (informativní) - Limitní hodnoty pro Thamnocephalus platyurus............. 9 13. Příloha C (informativní) - Literatura....................................................................... 10 Rotoxkit F • Testovací organismus: Brach ion us calycifloris (vodní vířní k) • Uchování: klidová stádia, cysty • Doba líhnutí: 18 hod., 20°C, 4000lx • Design: 6 opakování, 6 koncentrací v jedné destičce, jamka á 0,3 ml • Inkubace: 24 hod., 20°C, 4000lx • Vyhodnocení: mortalita, 24 LC50 Výhody: Domácí běžný druh, přídavná informace Nevýhody: Malý, většinou méně citlivý Závěr: zajímavý doplněk testů toxicity, není nutný, je-li v baterii korýš Obdobně Protoxkit s prvokem Tetrahymena thermophila Líhnutí cys virniku 15 mJ standardní voda ja»ka'pro lihnutí cysty Ü anpulka s cystami Testovací destička r\ ABODE» ^ (OOOOOOO (O'OOOOOO (O'OOOOOO (O'OOOOOO (O'OOOOOO 0)000000 s'", (1000-4000 lux) 10-15 min Inlcubace 16-18 hod pri 25°c í .■•■! Plnění testovací destičky radící voda C5 4 C4 C3 \J C2 řáděni toxické látky 0.7m! 0.3 ml r\r. "OOOOOO tOOOOOOO OOOOOO 'OOOOOO €3000000 yooooooo testovací destička \J Přenos vířniků do testovacích jamek 1 Přenos cca 50 vířniků do každé ředící jamky 5 vířniků v testovací janče E D i DC DC DC DC pc oooooc ( >ooooc c xdoooc ( >ooooc l±Jc_405QQQQC D D D D D D jamky pro test lihnuti -jamka Daphtoxkit pulex Výhody Jako ISO, OECD Z klidových stádií Nevýhody 3 dny líhnutí Nevyrovnané líhnutí Problémy se skladováním Povrchové tenze -neplavou Závěr: zatím není zcela vyladěný RAPIDTOXKIT Test s nejrychlejší odpovědí „jídelní test" - sledováno ovlivnění příjmu potravy stresem (toxickou látkou) Testovací organismus: Thamnocephalus platyurus Uchování: klidová stádia, cysty Doba líhnutí: 30-45 hod., 25°C, 4000lx Inkubace: 15-60min, 25°C, 4000lx Pak přidány červeně obarvené mikrospory (potrava), inkubace 15-30 min Vyhodnocení: pod mikroskopem zhodnocen příjem potravy v jednotlivých expozičních variantách -hodnocena inhibice příjmu mikrosporv porovnání s kontrolou Suspected water \J •': Control water Expose the test organisms (smalt larval crustaceans) hatched from dormant eggs to the suspected water and a control water, for a short period of time (15 minutes, to 1 hour) Add red microspheres and allow the lest organisms to take up the particles during 15-30 minutes Obsen'e the coloration of the digestive tract of the larvae under a stereomicroscope No uptake (or significantly decreased uptake) of the red microspheres points to the presence of « unwanted » compounds which should trigger attention and action Y E S SL N O KJ -> •!• Toxic hazard ? Testy toxicity na korýších/vířnících VALIDITA: Výsledky testu jsou považovány za platné, když • Koncentrace rozp. kyslíku neklesla pod 60% nasycení • Koncentrace testované látky neklesla pod 80% • Mortalita kontrolního vzorku nepřesáhla 10% • Zjištěná koncentrace LC50 je v souladu se standardy PŮDA + SEDIMENTY Mikrobiotest - OSTRACODTOXKIT FTM: 6 denní chronický test toxicity (mortalita/inhibice růstu) s korýšem Heterocypris incongruens. Kontaktní test v mikrodeskách 3x2 jamky (objem 1 ml). 10 j edinců na j amku, iTM Uchování: klidová stádia, cysty Doba líhnutí: 52 hod., 25°C, 40001x Inkubace: 6 dní, 25°C, 40001x Vyhodnocení: mortalita, 24 LC50, růst OSTRACODTOXKIT F MICROBIOTESTS FOR SEDIMENT TOXICITY TESTING With the benthic crustacean Heterocypris incongruens Testy toxicity s bezobratlými Ekonomické hodnocení (orientační ceny bez cla a dopravy) • Rotoxkit, Thamnoto.....................................1000KČ • Daphtoxkit..................................................1300KČ • Algaltoxkit..................................................4300KČ • ECHA Biocide monitor................................ 200KČ • MetPad.............................................. 500KČ • Toxichromotest (SedimentChromoPad), Toxichromotest....................................10OOKč Chronické testy s vodními bezobratlými živočichy Akvatické testy • Reprodukční test s hrotnatkou Daphnia spp. (ISO 1070/2000) • Test přežívání a reprodukce s břichatkou Ceriodaphnia dubia (USEPA, 1989) • Chronické biotesty s vidlonožci (Mysidacea - řád korýšů z podtřídy rakovců) - mořští, pronikají i do brakických a sladkých vod Sedimentové testy 10-denní test přežívání a růstu s ruznonožcem Hyalella azteca (USEPA, 2000) 42-denní test přežívání, růstu a reprodukce s ruznonožcem Hyalella azteca (USEPA, 2000) 10-denní test přežívání a růstu s pakomárem Chironomus tentans (USEPA, 2000) Celoživotní (Life-cycle) test pro hodnocení účiků kontaminace sedimentů s pakomárem Chironomus tentans (USEPA, 2000) Chronický test na Daphnia magna ČSN ISO 10706 Jakost vod - Stanovení chronické toxicity látek pro Daphnia magna Straus (Cladocera, Crustacea) • organismy mladší 24h • 10 organismů na koncentraci • individuálně v 50ml media M4/kádinku • médium výměna 3x týdně • expozice 21 dní • teplota 20 ± 2°C • pH 6-9 (±1,5) • rozpuštěný 02 > 3mg/l • fotoperioda 16 h světla / 8 h tmy • krmení směs řas Jednou týdně: 02, teplota, tvrdost a pH v médiu, kontrolních nádobách a u nejvyšší zkušební koncentrace. Příprava média Elendt M4 Zásobní roztoky SrCl2.6H20 MnCl2.4H20 ZnCl2 CoCl2.6H20 Na2Se03 CuCK.2H.O H3BO3 LiCl RbCl NaBr KI NH4V03 CaCl2.2H20, NaHC03, NaN03 MgS04.7H20, KH2P04, KCl, K2HP04, Na2Si03.9H20 Roztok I (stopové prvky) Thiamin hydrochlorid, Biotin, Cyanocobalamin Roztok II. '(makroživiny vitamíny) Zkušební roztok a zkušební koncentrace Zkušební koncentrace se připravuje alespoň v pěti variantách s faktorem <3,2 (geometr, řada) cn = c0*qn n =1,2,3,... Rozptyl koncentrací se nastavuje podle cíle testu: • LOEC/NOEC • EC X Nepoužívá se koncentrace se statisticky významným účinkem na přežití dospělců -> toxicita pro reprodukci a mortalitu Rozpouštědla a dispersanty do 0.1 ml/l, lépe je nepoužívat 240 220 200 180 •g 160 C HL 140 .c o •^ 120 (D N § 100 C S 80 o Q. 60 40 20 0 Sledované parametry Mortalita, přežívání Reprodukce Počet narozených j uvenilů Den první reprodukce Chování - způsob pohybu koncentrace 15 mg/l -•— control -■- Biaw\s S -»- AQ.EXTT -*- C18 PER WCT MEATE -•- C18 ELU ATE ' * -^^f i^^ ľ 10 12 14 16 čas (dny) 18 20 22 koncentrace 135 mg/l 100 80 60 40 20 ^S contorl bioMass aq. extract c18 permeate C18 ELUATE! X -♦---♦---♦- 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 čas (dny) další parametry (zbarvení, tukové kapénky, velikost gonád) - měření délky matečných organismů na konci zk. - velikost a počet potomků jednoho organismu - počet potracených plůdků,... Testy toxicity s bezobratlými Závěr pro konkrétní případ, vzorek a problém může zkušený ekotoxikolog vybrat vhodnou kompozici detekčního systému akutní testy toxicity jsou jednou z několika součástí systému hodnocení - chemické analýzy - struktura zoocenoz a fytocenoz - biokumulace a biokoncentrace -QSAR - biomarkery - atd...