Fluorescence v klinické praxi: molekulární cytogenetika RNDr. Jan Škoda, Ph.D. / RNDr. Jakub Neradil, Ph.D. Ústav experimentální biologie PřF MU 1 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Osnova  Fluorescence v klinické praxi – přehled metod  Molekulární cytogenetika a fluorescence  Fluorescenční hybridizace in situ (FISH)  Využití FISH  Modifikace FISH • Mnohobarevná FISH (M-FISH) a spektrální karyotypování (SKY) • Komparativní genomová hybridizace (CGH) • Array-CGH 2 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Fluorescence v klinické praxi  využívaná především jako nedestruktivní cesta označení a analýzy biologických vzorků  autofluorescence nebo značení s využitím fluorochromů Přístupy analýzy  spektrofluorimetr (kyveta/mikrodestička)  průtokový cytometr/sorter  fluorescenční mikroskop 3 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Spektrofluorimetrie  detekce proteinů, toxinů, biomarkerů  detekce a měření koncentrace DNA a RNA  testy aktivity enzymů  testy toxicity, proliferace buněk 4 Invitrogen Qubit® 3.0 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Spektrofluorimetr s digitálním mikroskopem kombinace fluorescenční mikroskopie (+ světlé pole, fázový kontrast) a čtečky mikrodestiček (umožňuje snímat i mikroskopická skla, Petriho misky nebo kultivační láhve)  možnost využití standardních fluorimetrických metod současně s automatizovanou analýzou obrazu  zobrazení živých buněk, snímání v čase, fenotypizace, počítání buněk/populací… 5 Biotek Cytation 5 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Průtoková cytometrie a FACS  klinická imunologie (imunofenotypizace lymfocytů, funkční testy, stanovení produkce cytokinů, HLA typizace…)  hematoonkologie (imunotypizace leukémií, stanovení minimální reziduální nemoci, třídění buněk pro následné analýzy – např. FISH)  nádorová a molekulární biologie (nádorové markery, proliferace, buněčný cyklus, apoptóza, léková rezistence…) Výhody  rychlost = vysoká frekvence analýzy částic  citlivost = lze analyzovat velké množství částic a detekovat i nepočetné populace Nevýhody  potřeba buněk v suspenzi (nejčastěji živých)  nutnost zkušené obsluhy pro nastavení přístroje i analýzu výsledků (bez intuitivní vizuální kontroly) 6 Fluorescence activated cell sorting Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Zobrazovací průtoková cytometrie 7 Imaging Flow Cytometry Amnis ImageStream®X Mark II  jednotlivé částice (události) jsou snímány při průchodu kapilárou pomocí CCD kamery → pro každou částici existuje příslušný obraz → obrazová analýza  kombinace výhod průtokové cytometrie (rychlost, citlivost) a mikroskopie (morfologie, lokalizace a četnost struktur…) Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Zobrazovací průtoková cytometrie 8 http://www.bioimaging2014.ineb.up.pt/LABS.html Basiji DA et al.Clinics in laboratory medicine. 2007;27(3):653-viii. Lokalizace transkripčního faktoru NFkB FISH chrom. 8 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Fluorescenční mikroskop 9 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Molekulární cytogenetika a fluorescence  molekulární cytogenetika představuje spojení mezi klasickou cytogenetikou a molekulární biologií  Využívá poznatky molekulární biologie, fluorescence, mikroskopie a počítačové analýzy obrazu ke studiu struktury a vlastností chromozomů (DNA)  metody založené na použití specifických fluorescenčně značených DNA sond  umožňuje analýzy početních i strukturních odchylek chromozomů neidentifikovatelných klasickými cytogenetickými technikami  nevyžaduje přítomnost mitóz (I-FISH: možnost analýzy buněk v interfázi) 10 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Historie a milníky lidské cytogenetiky „Hypotonic Period“  hypotonizace buněk (KCl), kolchicin - akumulace mitóz (1951)  fytohemaglutinin (PHA) - stimulace lymfocytů periferní krve (1960)  stanovení přesného počtu lidských chromozomů – 1956 (Tjio JH, Levan A) „Trisomy Period“  trizomie chromozomu 21 (1959)  první deleční syndrom - „cri du chat“ (1963) „Banding Area“  pruhovací techniky barvení chromozomů (1968 – 1970); G-, R-, C-pruhy „Molecular Area“  metoda hybridizace in situ (1970), fluorescenční ISH (1986)  komparativní genomová hybridizace (CGH) (1992)  spektrální karyotypování (M-FISH, SKY) (1996)  M-pruhování (2001) „Molecular karyotyping“  DNA čipy 11 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Genetická ambulance genealogické vyšetření chromozomy cytogenetické vyšetření pacient molekulárně-genetické vyšetření DNA klasické molekulárně- cytogenetické Molekulární cytogenetika při genetickém vyšetření 12 Cytogenetická laboratoř Laboratoř DNA/RNA diagnostiky RNA Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika  fluorescenční mikroskop vybavený sadou fluorescenčních filtrů  citlivá černobílá CCD kamera  počítač a specifický software pro metody FISH, M-FISH, CGH  skener + software pro analýzu array-CGH čipů Vybavení molekulárně-cytogenetické laboratoře 13 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Fluorescenční hybridizace in situ (FISH)  1969 Parduová a Gall – radioaktivní značení  1986 Pinkel et al. – fluorescenční značení sondy (FISH) Hybridizace fluorescenčně značené sondy s DNA metafázních chromozomů nebo interfázních jader na cytogenetickém preparátu  zhotovení kvalitního preparátu obsahující cílové místo na DNA (metafázní chromozómy, interfázní jádra, tkáňové preparáty)  denaturace cílového místa (preparátu)  denaturace sondy  hybridizační reakce mezi sondou a cílovým místem  odstranění nenavázané či nespecificky vázané sondy  barvení pozadí  vyhodnocení a zpracování fluorescenčního signálu 14 Fluorescence in situ hybridization Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika FISH Příprava chromozomových preparátů Vyhodnocení na fluorescenčním mikroskopu Značená sonda hybridizovaná s cílovou sekvencí Sonda D e n a t u r a c e H y b r i d i z a c e Značení fluorochromem Cílová sekvence Princip FISH 15 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Zdroje DNA pro přípravu sond  klonované sekvence DNA inkorporované do vektorů, plazmidů, kosmidů  chromozomy získané FACS  mikrodisekce chromozomů či jejich součástí 16 Značení – dle způsobu detekce sond  radioaktivně  hapteny (biotin, digoxigenin) – nepřímé značení  enzymy (HRP, AP)  fluorochromy (FITC, TRITC, Texas Red, SpectrumGreen, SpectrumOrange, SpectrumRed, SpectrumBlue, SpectrumGold) Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Fluorescenční barviva v genetice FLUOROCHROM EXCITAČNÍ MAX. (nm) EMISNÍ MAX. (nm) BARVA FLUORESCENCE a) značení sond AMCA 350 450 modrá Fluorescein - FITC 495 515 zelená Rhodamin 550 575 červená Rhodamin - TRITC 575 600 červená Texas red 595 615 červená Cy3 552 565 červená SpectrumOrange 559 588 červená SpectrumGreen 509 538 zelená SpectrumAqua 433 480 modrá b) barvení pozadí DAPI 355 450 modrá Hoechst 33258 356 465 modrá Propidium jodid 530 615 červená 17 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika  Lokusově specifické  Centromerické  Telomerické  Celochromozomové  … Typy sond dle místa vazby 18 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Lokus SNRPN (Abbott Molecular) 19  Delece v oblasti 15q11-q13 vedou ke vzniku mikrodelečních syndromů  Angelmannův syndrom (maternální chromozom) a Prader-Willi syndrom (paternální chromozom) Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika FISH: přítomnost, počet a poloha signálů! 20 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Cytogenetika interfáze 21 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Cytogenetika interfáze 22 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Cytogenetika interfáze – vyšetřování translokací v onkogenetice 23 Filadelfský chromozom  t(9;22)(q34;q11)  gen pro kinázu Abl se translokuje do oblasti genu BCR → expresí vzniká fúzní protein, konstitutivní kinázová aktivita → deregulace buněčného dělení a dalších procesů Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Translokace BCR/ABL – interfáze 24 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Translokace SS18 – split sonda  Translokace genu SS18 asociována se synoviálním sarkomem – diagnostika  Součást molekulárně patologického vyšetření – tkáňové řezy 25 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Konfokální mikroskopie a nové trendy ve fluorescenční mikroskopii FISH Výhody  nevyžaduje přítomnost mitóz (ve většině případů) – lze analyzovat buňky v interfázi i tkáňové řezy  rychlé (relativně) zhodnocení velkého počtu buněk 26 Nevýhody  neposkytuje celogenomový pohled  není vhodná pro analýzu neznámých aberací Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika FISH a její modifikace  Fiber FISH  RxFISH  ZOO-FISH  Mnohobarevná FISH (M-FISH)  Spektrální karyotypování (SKY)  Mnohobarevné pruhování (M-banding)  Komparativní genomová hybridizace (CGH)  Technologie array-CGH 27 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Fiber FISH 28 Princip  extrakce vláken DNA z jádra → roztěr na mikroskopické sklo → jednotlivá natažená vlákna DNA  jednotlivé geny jsou viditelné na základě fluorescenčních signálů  rozlišení kolem 1 kb Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Technika RxFISH  hybridizace lidských chromozomů s celogenomovou DNA sondou odvozenou z genomu gibona (x = cross species)  DNA člověka – DNA gibona: 98 % sekvenční homologie, avšak u gibona se vyskytují mnohonásobné přestavby chromozomů Výsledek:  18 párů s mnohobarevným vzorem (R = rainbow of colors)  6 párů v jedné barvě  můžeme detekovat intrachromozomové přestavby 29 Cross-species color banding Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika 30 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika FISH v komparativní cytogenetice – ZOO FISH  komparativní cytogenetika – studium evoluce lidského karyotypu  založena na použití celochromozomových DNA sond, které jsou hybridizovány na chromozomy jiného druhu  např. chromozom 2 u lidí – fúze chromozomu 12 a 13 u šimpanze  ZOO-FISH: hybridizace DNA různých živočišných druhů 31 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Mnohobarevná FISH (M-FISH) a spektrální karyotypování (SKY)  Speicher et al., 1996 (M-FISH), Schröck et al., 1996 (SKY)  vícebarevné FISH techniky – detekce více značených sond na jednom preparátu  v jedné hybridizační reakci simultánní vizualizace všech 22 autozomů a chromosomů X a Y v odlišných barvách  kombinatorní značení – 2 fluorochromy 3 sondy (= chromozomy) 3 fluorochromy 7 sond 4 fluorochromy 15 sond 5 fluorochromů 31 sond Počet kombinací: 2N - 1 32 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika  hybridizace preparátu se směsí 24 chromozomově specifických celochromozomových sond vzniklých kombinatorním značením (5 fluorochromů)  každá sonda je charakterizovaná emisním spektrem, které umožňuje identifikaci chromozomu M-FISH a SKY 33 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika M-FISH Mikroskop vybavený:  6 fluorescenčními úzkopásmovými filtry (pro 5 fluorochromů + DAPI)  citlivou CCD kamerou  specializovaným softwarem pro analýzu obrazu (např. Lucia MFISH, MetaSystems Isis mFISH…) Postup  snímání jednotlivých fluorochromů  složení obrazu  počítačová analýza – dle kombinace fluorochromů přiřazení pseudobarev  vyhodnocení 34 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika M-FISH 35 Snímání jednotlivých fluorochromů, složení obrazu http://www.lucia.cz/cs/front-page/lucia-mfish Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika M-FISH 36 Počítačová analýza – přiřazení pseudobarev, vyhodnocení http://www.lucia.cz/cs/front-page/lucia-mfish Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Spektrální karyotypování (SKY)  mikroskop vybavený filtrem pro DAPI a specializovaným systémem (interferometr) pro měření spektra emitovaného světla (GenASIs HyperSpectral) 37 GenASIs HyperSpectral (Applied Spectral Imaging )  emise fluorochromů (Spectrum Orange, Spectrum Green, TexasRed, Cy5, Cy5.5) snímána najednou (rozdíl oproti M-FISH)  systém měří spektrum pro každý pixel obrazu  speciální počítačový program přiřadí na základě měření vlnových délek každému páru chromozomů barvu, ty se označují jako pseudobarvy Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika 7 7 12 12 7 7 12 12 Analýza obrazu pomocí software HiSKY 38 Software automaticky rozliší chromosomy dle změřeného spektra a zobrazí je v odpovídajících pseudobarvách – lze snadno rozlišit chromozomové páry a případné chromozomální aberace. Automaticky sestaví karyotyp… Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika  Pacientovi diagnostikován neuroblastom. Pomocí SKY detekována translokace t(11;22) specifická pro Ewingův sarkom → změna diagnózy a léčebného protokolu. 39 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika M-FISH a SKY Výhody  odhalení balancovaných přestaveb  detekce aberací v jednom kroku • kryptické translokace a inzerce • marker chromozomy • nadbytečný materiál neznámého původu • komplexní přestavby Nevýhody  vyžaduje kvalitní mitózy – vhodný materiál, metodicky a časově náročné  úspěšná hybridizace  finančně nákladné  nelze detekovat inverze, duplikace/delece menšího rozsahu 40 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika  parciální malovací sondy ze specifických oblastí chromozomů  fluorescenční signály jednotlivých sond se podél sledovaného chromozomu částečně překrývají a dochází k jejich kombinaci Mnohobarevné pruhování (M-banding) 41 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Mnohobarevné pruhování (M-banding) 42 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Chromozom 5  charakterizace místa zlomu  rozlišení intrachromozomových přestaveb 43 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Hybridizace: metoda založená na technice FISH Genomová: umožňuje v jedné hybridizační reakci detekovat nebalancované změny v celém genomu; stanovit chromozomové změny vedoucí ke ztrátám (monozomie, delece) či zmnožení (zisky, amplifikace) sekvencí DNA Komparativní: založená na porovnávání dvou genomů Komparativní genomová hybridizace (CGH) 44 Comparative genomic hybridisation Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Kallioniemi et al. 1992 Vývoj CGH byl podnícen snahou o rozvoj cytogenetiky solidních nádorů 45 CGH nevyžaduje mitotickou aktivitu zkoumaných buněk – materiál pro CGH je DNA! Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Jednotlivé kroky metody CGH  příprava normálních metafázních chromozomů (od zdravého jedince)  izolace DNA z nádoru, periferní krve, kostní dřeně (2–3 µg) + referenční DNA  značení testované a referenční (normální) DNA rozdílnými fluorochromy (nick-translace, fragmenty 600 – 2000 bp)  denaturace, hybridizace značené DNA na normální metafázní chromozomy  snímaní metafáz (10-20) citlivou CCD kamerou pod jednotlivými filtry  karyotypování chromozomů nabarvených DAPI  statistické zpracování a počítačové vyhodnocení poměrů intenzit fluorescence podél jednotlivých chromozómů pomocí speciálního programu  místa s vyšší či nižší intenzitou fluorescence odpovídají oblastem zisků a ztrát sekvencí DNA – profily 46 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Princip CGH Izolace a kvantifikace genomové DNA  v následujících krocích použito stejné množství testované a referenční DNA Značení (nick-translace) vzorků DNA odlišnými fluorochromy  obvykle testovaná zeleně a referenční červeně Smíchání ekvivalentních množství DNA a aplikace směsi na metafázní chromozomy → hybridizace  sondou je celogenomová DNA 47 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Princip CGH Ve směsi využita Cot-1 DNA  připravena z placentální DNA  potlačuje hybridizaci Alu a dalších repetitivních sekvencí Fragmentace značené DNA  optimalizace hybridizace na metafázní chromozomy 48 ReferenReferenččnnáá DNADNA CotCot––11 TestTestovanovanáá DNADNA CotCot––11 potlapotlaččujeuje hybridizhybridizááciuciu repetitivnýchrepetitivných sekvencisekvenciíí ReferenReferenččnnáá DNADNA CotCot––11 TestTestovanovanáá DNADNA CotCot––11 potlapotlaččujeuje hybridizhybridizááciuciu repetitivnýchrepetitivných sekvencisekvenciíí … následuje 48–72 h hybridizace, odmytí nenavázané sondy, podbarvení chromozomů pomocí DAPI a snímaní pod fluorescenčním mikroskopem. Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Nasnímání mitóz citlivou CCD kamerou v modrém, zeleném a červeném spektru → složený obraz  výrazné barevné odchylky naznačují přítomnost chromozomových aberací 49 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Pomocí DAPI podbarvení se na chromozomech vytvoří pseudo G-pruhování  identifikaci jednotlivých chromozomů – zobrazení jako karyogram 50 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Referenční DNA Počítačová analýza obrazu: Zelená s červenou… Testovaná DNA 51 + Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika enh  zisky, amplifikace dim  ztráty, delece heterochromatin hodnota 1 hranice 0,8 hranice 1,2 č. chromozomu počet hodnocených chromozumů zelená - zisk červená - ztráta výsledný poměr fluorescence Interpretace výsledku CGH 52 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika rev ish enh (15q) rev ish dim (17p, 18q, Y) Ukázka profilu CGH zpracovaného počítačovou analýzou obrazu u pacienta s CLL 53 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Sumarizace výsledků z více vzorků 54 Souhrný výsledek CGH u 15 pacientů s neuroblastomem  Identifikace markerů onemocnění  Identifikace kauzálních aberací Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Výhody  nevyžaduje mitózy pro testovaný vzorek  poskytuje přehled numerických změn v celém genomu v jedné hybridizační reakci Nevýhody  nemožnost využití u změn, při kterých se nemění počet sekvencí – balancované aberace (translokace, inverze)  není vhodná k odlišení ploidie (normalizace)  možnost identifikovat jenom změny přítomné min. v 50 % buněk  rozlišovací schopnost 10 Mb  HR-CGH, aCGH Výhody a nevýhody klasické CGH 55 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Komparativní genomová hybridizace s vyšším rozlišením (HR-CGH) Kirchhoff et al., 1997 Princip HR-CGH:  laboratorní postup stejný jako v případě CGH  odlišné vyhodnocování pomocí speciálního software – statistika! (Laboratory Imaging s r.o., Praha)  rozlišovací schopnost – 4 Mb  klonální zastoupení – 30 % 56 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika CGH HR-CGH rev ish enh (15q) rev ish dim (17p, 18q, Y) rev ish enh (15q) rev ish dim (4p, 9p, 9q12, 13q14, 17p, 18q, Y) Porovnání výsledku CGH a HR-CGH u pacienta s CLL 57 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika  skládají se z jednotlivých molekul DNA o známé sekvenci (sondy), které jsou upevněny ve shlucích (spoty) na pevném podkladu (sklo, syntetické materiály)  počet spotů se pohybuje od řádově stovek do desetitisíců podle typu čipů  umožňují detekci chromozomových aberací, mutací a polymorfizmů, sekvenační analýzy ale i studium genové exprese  principem metody je hybridizace značené vyšetřované DNA s imobilizovanými sondami na čipu DNA čipy 58 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Analýza genomu  materiál: genomová DNA  array-CGH, SNP čipy, resekvenační čipy Expresní a funkčně specifické studie  mRNA, proteiny (např. transkripční faktory) Epigenetické studie  ChIP-on-Chip (vazba proteinu/komplexu na DNA) Aplikace DNA čipů 59 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika  Solinas-Toldo et al., 1997  vychází z principu klasické (chromozomální) CGH  nahrazení chromozomů separovanými klony (BAC, c-DNA klony, oligonukleotidy)  duplikace, delece, amplifikace – CNV(copy number variants)  nedetekuje balancované přestavby  Array-CGH 60 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Postup  Izolace DNA  Kontrola kvality, stanovení kvantity • Celogenomová amplifikace (WGA)  Naštěpení DNA  Naznačení DNA - fluorescence  Hybridizace  Odmytí  Skenování  Analýza dat Array-CGH 61 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Princip array-CGH 62 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika 5. Scanning www.agilent.com 6. Analysis and interpretation Příprava DNA čipů pro techniku array-CGH 63 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika aCGH Analytics Software, Agilent Technologies Vyhodnocování array-CGH 64 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika 1p36 delece a MYCN amplifikace Celogenomová analýza u pacienta s neuroblastomem pomocí aCGH 65 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika 1. Velikost klonů Úseky genomové DNA vložené do vektorů  BAC (Bacterial Artificial chromosome) - 50–200 kb  PAC (Phage Artificial chromosome) - 75-200 kb  Rozlišení ~ 1Mb cDNA - 1-2 kb  Pouze genové oblasti  Rozlišení - 1-2 kb Oligonukleotidy - 25-85 bazí  Rozlišení pod 1 kb  s krátkymi nebo dlouhými oligonukleotidy  v současnosti nejrozšířenějším typem, použitelné pro prakticky všechny aplikace Rozlišení array-CGH 66 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika 2. Rozložení a vzdálenost klonů Cílená aCGH – vybrané oblasti zájmu, např. mikrodelece, mikroduplikace Chromozomově-specifická aCGH Celogenomová aCGH  sondy v určitých intervalech  překrývající se – tilling arrays Davies et al., 2005 Rozlišení array-CGH 67 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Oligo arrays 8x15K custom chip 4x44K 43 kb rozlišení 2x105K 21 kb rozlišení 1x244K 9 Kb rozlišení Nové typy – Sure Print G3 Human 8x60K 41 Kb rozlišení 4x180K 13 Kb rozlišení 2x400K 5 Kb rozlišení 1x1M 2 Kb rozlišení HRCGH negativní 8x15K negativní 4x44K del(1)(p36) 2x105K del(1)(p36) del(1)(p36), cca 3 Mb Agilent Human CGH Microarray 68 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Výhody  přehled numerických změn v celém genomu v jedné hybridizační reakci  přesná lokalizace změn – vysoké rozlišení Nevýhody  neodhalí balancované aberace (translokace, inverze)  neodhalí změny ploidie (např. tetraploidní nádor)  časová a finanční náročnost Array-CGH 69 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Molekulární karyotypování – 1000x citlivější než klasická cytogenetika 70 ! ALE ! Redukuje informaci o heterogenitě analyzované buněčné populace Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Klinická cytogenetika: Prenatální cytogenetická diagnostika Vyšetřovaný materiál  kultivované i nekultivované buňky plodové vody, fetální krev, choriové klky FISH AneuVysion Assay Kit (Abbott Vysis)  trizomie chromozomů 13, 18, 21 (Patau, Edward, Down sy)  vyšetření sestavy a počtu gonozomů (XX, XY) Mikrodeleční syndromy  DiGeorge sy (del(22)(q11.2)) Array-CGH:  Celogenomový screening 71 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika t(13;15) trizomie chr. 18Normální buňky Prenatální cytogenetická diagnostika 72 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Klinická cytogenetika: Postnatální cytogenetické analýzy Vyšetřovaný materiál  periferní lymfocyty, bukální stěry  Mikrodeleční syndromy – FISH • DiGeorge sy, Prader-Willi/Angelman sy, Williams-Beuren sy, 1p36 mikrodeleční sy a další  Původ marker chromozomů – CGH, SKY, WCP FISH  Identifikace a specifikace numerických a strukturních chr. aberací – CGH, SKY  Detekce gonozomálních mosaik – FISH (X/Y sondy) 73 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika Postnatální cytogenetické analýzy SKY: identifikace marker chromosomu (chr. 11) FISH: DiGeorge syndrom 74 Bi8920 Fluorescenční mikroskopie – Fluorescenční mikroskopie v klinické praxi: molekulární cytogenetika 75