Kořenový meristém a vývoj kořenů Plant Anatomy Laboratory Micrographs of plant cells and tissues, with explanatory text. http://www.sbs.utexas.edu/mauseth/weblab/ James D. Mauseth Integrative Biology University of Texas Objective: This web site is being developed as supplemental material for people studying plant anatomy. Its objective is to provide light micrographs of the types of cells and tissues that students typically examine in a plant anatomy course. All micrographs are accompanied by figure legends to help the viewer interpret and understand the structures presented. Funkce kořene Kořen zajišťuje: * růst (kořenový apikální meristém) * penetraci do půdy (kořenová čepička a oblast elongace kořene) * absorpci vody a minerálních látek (kořenové vlášení v zóně diferenciace a mykorrhiza) * upevnění rostliny v půdě Struktura kořene - radiální podobná jako u stonku, ale jednodušší (kořen netvoří internodia a listy) primární stavba kořene na příčném řezu ­ rhizodermis ­ primární kůra, endodermis ­ střední válec * pericykl * cévní svazky (radiální) * ve středu někdy dřeň Schéma příčného řezu kořenem Příčný řez kořenem dvouděložné rostliny tetrarchní CS, Ranunculus detail středního válce Příčný řez kořenem jednoděložné rostliny http://schoolnet.gov.mt/liceohamrun/resources/TransportinPlants.pps polyarchní CS Terminologie apikální část kořene ­ kořenová čepička ­ vlastní kořen kořenový (sub)apikální meristém ­ vnitřní část čepičky ­ vrchol vlastního kořene vnější část kořenové čepičky tvoří buňky dozrálé Primární růst kořene a stavba kořene - na podélném řezu zóny: ­ meristematická ­ přechodná ­ zóna elongace buněk (prodlužovací) ­ zóna diferenciace buněk Prof. B. Němec ­ autor statolithové teorie Struktura kořene Arabidopsis Jiang et Feldman 2005 Zakládání kořenového meristému v embryogenezi Arabidopsis Scheres et al. Development 120, 1994 Scheres et al. Development 120, 1994 Protomeristém Arabidopsis Protomeristém Arabidopsis Scheres et al. Development 120, 1994 Vizualizace jaderného dělení v kořeni Arabidopsis Scheres et al. Development 120, 1994 [3H]thymidine-labelled root 3 days after germination. Silver grains marking labelled nuclei are visible as black dots. Indigogenní vizualizace cyklinu B CYCB::uidA Typy kořenových meristémů Guttenberg * otevřený (opened) ­ všechna pletiva kořenové špičky mají společné iniciály (kapradiny, Pinus, Picea, Elodea) * uzavřený (closed) ­ všechna pletiva mají příslušné iniciály a kořenová čepička je jednoznačně oddělena od vlastního kořene (Brassicaceae, Solanaceae, Cyperaceae, Poaceae) Podélný řez kořenovou špičkou kapradiny www.sbs.utexas.edu/mauseth/weblab/webchap6apmer/web6.8-1a.jpg otevřený typ s jednou iniciální buňkou (šipky) Uzavřený kořenový apikální meristém Typha www.sbs.utexas.edu/mauseth/weblab/webchap6apmer/web6.8-1a.jpg Uzavřený kořenový apikální meristém Brassica Arabidopsis Kořenový apikální meristém PisumLinum Uzavřený kořenový apikální meristém Zea www.sbs.utexas.edu/mauseth/weblab/webchap6apmer Jiang et Feldman 2005 Protoderm Typha The prominent row of flat, brickshaped cells is the protoderm (between arrows), and for the entire distance here, it is a uniform layer, distinct from the root cap. Because it is so distinct, this is a closed root apical meristem. The cells of the root proper have been dividing so much that they are still small, despite the fact that they have also been enlarging, whereas the cells in the root cap have undergone many fewer divisions, so they are much larger. http://www.sbs.utexas.edu/mauseth/weblab/ Buněčné typy v RAM Arabidopsis Malamy et Benfey Development, 124, 1997 Buněčné typy v RAM Arabidopsis Scheres et al. 2002 The Arabidopsis Book Stavba RAM u Arabidopsis úroveň QC 3 6 9 12 15 27 69 120 p -pericykl pp ­ protofloém Helariutta et al. 2000 Formování RAM u Arabidopsis Benfey et Scheres transkripční faktory SCARECROW SHORT-ROOT Transkripční faktor SCARECROW (SCR) je součástí informace o pozici kmenových buněk u kořenového meristému Arabidopsis SCR poprvé identifikován díky jeho roli při radiálním utváření kořene (,,radial patterning"), je nutný pro distální specifikaci QC, jež naopak reguluje osud kmenových buněk obklopujících QC Sabatini et al. 2003 Defects in QC identity and columella stem cell activity in the scr-1 mutant Exprese SCR-GFP QC25 QC46 Polární lokalizace PIN proteinů Feraru et Friml 2008 Gradient auxinu a rychlost dělení buněk Jiang et Feldman 2005 Ioio et al. 2008 Regulace kořenového meristému Arabidopsis exogenní aplikace cytokininů snižovala počet buněk meristému tZ QC25 kontrola Regulace kořenového meristému Ioio et al. 2008 cytokininy regulují velikost kořenového meristému kontrolou diferenciace buněk Vývoj kořenového vlášení Foreman et Dolan 2001 1 2 3 4 Zakládání laterálních kořenů * u kořenů neexistují základy laterálních orgánů (narozdíl od axilárních meristémů prýtů) * laterální kořeny se musí vyvíjet z meristémů aktivovaných v diferencovaném pletivu pericyklu (latentní meristém) Stadia vývoje laterálního kořene u Arabidopsis Malamy et Benfey Development, 124, 1997 Arrows point to new cell walls indicating anticlinal divisions in the pericycle. A periclinal division has divided the LRP into two layers, outer layer (OL) and inner layer (IL). A periclinal division in OL has created a total of three layers. Stage I. Stage II. Stage III. Stadia vývoje laterálního kořene u Arabidopsis A periclinal division in IL creates a fourth layer. Stage IV. Arrow indicates a single anticlinal division in the center cells of OL1 and OL2. Stage Va. Arrows indicate two additional anticlinal divisions in OL1 and OL2. The short arrow indicates the region in which cells of the IL2 undergo expansion and division, distorting the shape of IL1 and OL2. Cells in the outermost layer are numbered to indicate the constant organization at this stage. Stage Vb. Malamy et Benfey Development, 124, 1997 Stadia vývoje laterálního kořene u Arabidopsis Malamy et Benfey Development, 124, 1997 A periclinal division in all but the center cells of OL2 creates a new tier of cells (arrows). The two tiers are designated OL2a and OL2b. Stage VIa. Four central cells in OL1 divide periclinally to create another new tier at the tip of the primordium (arrow). Numbering shows that there are now four cells in OL1 on either side of four divided central cells. The OL1 is considered to be the inner of these two layers of divided central cells. Stage VIb. All the cells in the OL1 have undergone anticlinal divisions, as evidenced by the cell shape and the increased number of cells in this layer. This gives the characteristic 8-8-8 cell pattern, as indicated by cell numbering. Stage VII. Stadia vývoje laterálního kořene u Arabidopsis Malamy et Benfey Development, 124, 1997 (J,K) Emerging LRP. Note that the cells in the OL1 are enlarged. The number of cells near the apex has increased slightly, potentially indicating the first divisions of meristematic initials. (L) Fully emerged LR. Note the gross increase in size that has occured in the basal cells of the OL1. Cell numbering indicates that there are now more cells in this layer near the root tip, consistent with the presence of an active lateral root apical meristem. Bar= 50 m. Distribuce auxinu a vývoj primordia laterálního kořene u Arabidopsis exprese DR5::GUS Vliv 2,4-D Imunolokalizace IAANPA Benková et al., Cell, 2003 Laterální kořen Zea mays Salix