•Haploidní •Diploidní •Tetra- … polyploidní (pivovarské kmeny) Saccharomyces cerevisiae - haploidní genom - 12Mbp, 16 chromosomů (chrI=0.22 – chrXII=1.6Mbp) - Krátké centromery a ARS (100bp) - až 200 kopii rDNA v repetici (9kbp, chrXII), 262 tRNA, 40 snRNA, - Geny (cca 6500) reprezentují 75% celkové sekvence (kompaktní) - Redundantní (2000 genů duplikováno) – cca30% genomu vzniklo duplikacemi - <5% genů (220) obsahuje introny (0.5% genomu), - 3% Ty1-5 transposony (46% u člověka) - Kondenzovaný/tichý heterochromatin: centromery, telomery a HMR/HML Základní prvky kvasinkového chromosomu PFGE - princip 3 •PFGE gel obsahuje vzorky DNA uvnitř agarózových bločků (minimalizace náhodných zlomů velkých molekul DNA) •DNA prochází agarózou v závislosti na vloženém napětí •při změně směru elektrického pole však větším molekulám DNA trvá déle, než se přeorientují • - contoured clamped homogeneous electric field (CHEF) - hexagonální box – změna úhlu pole Karyotypizace •rozlišení druhů v rámci Saccharomyces 4 chrIII Chromosom III (nejmenší) CEN=centromera ARS=autosomal replicating sequence TEL=telomery tRNA Ty transposony MAT a HML/HMR lokusy Heterochromatin: centromera telomery HMR a HML (MAT je aktivní určuje haplotyp) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:5213-5218. Struktura kvasinkových telomer Lowell et al., Cell Mol Life Sci (1998), p.32 300bp Repetice ~5.5kbp Telomery umlčují transkripci – ADE2 reporter je pod kontrolou telomer pouze občasně náhodně transkribován Cohen et al., Curr Genetics (1998), p.83 E. Blackburn, Nobelova cena, 2009 Struktura kvasinkových telomer Lowell et al., Cell Mol Life Sci (1998), p.32 300bp Repetice ~5.5kbp Telomery umlčují transkripci – ADE2 reporter je pod kontrolou telomer pouze občasně náhodně transkribován YAC (yeast artificial chromosome) » • Studium kvasinkových elementů chromosomů definovalo nezbytné části a délku: • CEN, ARS, TEL • • minimální délka 50kbp • (až 500kbp insert např. lidská genová banka pro HuGO 80000 klonů YAC (270kbp) • • Lze analyzovat pomocí PFGE rDNA - repetice •rDNA kóduje geny pro ribosomální RNA •Je vysoce konzervativní •Identifikace a odlišování kvasinkových druhů •Sledování evolučních trajektorii •Až 200 kopii v řadě za sebou •Problém s homologní rekombinací •Problém s replikací – ve stejném směru jako • transkripce (probíhá v S-fázi – kolize) Centromera S. cerevisiae Chan et al., Trends in Cell Biol, 2005 Centromera S. pombe - Pouze 3 chromozomy (13 Mbp = 3.5, 4.6, 5.7) - kondenzované chromozomy - geny pro heterochromatin (S.c. nemá) - velké repetitivní centromery (40-100kb) a 1kb počátky replikace Carroll a Straight, Trends in Cell Biol, 2006 Reinhardt a Bartel, Science, 2002 siRNA silencing Pozorování DNA/chromosomů u kvasinek •Chromosomy jsou u kvasinek malé a těžko pozorovatelné – barvení DNA na fixovaných preparátech pomocí DAPI (4 ,6-diamidino-2-phenylindole) •Použití centromerických proteinů-GFP (green fluorescence protein) pro studium dynamiky chromatinu •TetR-GFP represor se váže na TetO sekvence (operon) zaintegrované v přesně definovaném lokusu •ChIP (chromatin immune precipitation) – specifické sekvence, ChIP-seq nebo „ChIP on CHIP“ DAPI Saccharomyces cerevisiae Schizosaccharomyces pombe Pozadí = mtDNA -zahájení tvorby pupene a duplikace SPB – začátek S fáze tj. replikace -rozchod jaderných plaků na opačné póly – přechod z S do G2 fáze -jádro se protahuje – začátek M fáze (u kvasinek se jaderná membrána nerozpadá) -na začátku anafáze dochází k oddělení sesterských chromatid a jejich segregaci - SPB-GFP barvení Actin_2 DNA v průběhu buněčného cyklu S.cerevisiae Image courtesy of Jonathan Millar, Division of Yeast Genetics, National Institute for Medical Research, London Separace a segregace chromosomů (centromera-kinetochora=Ndc80-GFP + SPB=Cdc11-CFP) Model separace chromosomů APC=anaphase promoting complex Uhlmann et al., Nature, 1999 Cohesin komplex (SMC=structure maintenance of chromosome) SMC1, SMC3, Scc1 a Scc3 Separasa-securin TetR-GFP TetO Použití TEV proteasy Kohesin „objímá” DNA Hearing et al, 2002, Mol Cell SMC1 Scc1/Rad21 SMC3 Scc3 Použití fůzních proteinů při studiu kohese sesterských chromatid SMC3-Scc1-Frb + SMC1-FKBP12 (váží rapamycin) Gruber et al., Cell, 2006 Vstup DNA přes opačný konec než uvolnění Gruber et al., Cell, 2006 Uzamčení je pro buňku letální Kohesin napomáhá při opravě dvou-řetězcových zlomů v G2/M fázi Lowdens a Toh, Current Biology, 2005 > Poškození DNA •Studium kvasinek po ozáření … rad mutanty (např. RAD21, RAD50, RAD51) –Ionizující záření generuje především DSB (double-strand break) –UV záření modifikuje nukleotidy tzv. TT-dimery •Chemická činidla/mutageny modifikuji nukleotidy – mají za následek změnu genetické informace –MMS (methyl methan sulfonat) – (např. MMS21) –Alkylační činidla (např. EMS = ethyl methan sulfonat), ROS (reactive oxygen species) •HU (hydroxy urea) blokuje replikaci – v mutantách dochází ke kolapsům replikační vidlice (např. HUS1) => DSB • • 0721 Opravné mechanismy •Dvoj-řetězcové zlomy (DSB) –homologní rekombinace (HR) – v přítomnosti homologů (tj. sesterské chromatidy v G2 fázi) –nehomologní spojování konců (NHEJ) – v G1 fázi •Jednořetězcové zlomy, modifikace nukleotidů –Přímé opravy (specifické enzymy) –Vystřihování poškozeného úseku (BER, NER – excision repair) •Opravy chybného párování –MMR – mismatch repair (MSH1-6, MLH1-3) –Speciální polymerázy (TLS – translesion synthesis) Oprava DSB • Lisby a Rothstein, DNA repair, 2009 Závěry •Kvasinky jsou využívány v biotechnologiích (pivo…) •V klinické praxi mohou být nebezpečné pro pacienty se sníženou imunitou … •Jako modelový organismus •studium buněčných procesů •Genetické, evoluční … analýzy