Alois Kozubík SIGNALIZACE A LIPIDOVÝ METABOLISMUS Obecnější principy a jejich aplikace v buněčné fyziologii; Spolupůsobení látek různé chemické povahy Buněčné signalizace obecněji s důrazem na metabolismus lipidů, zpětnovazebné reakce - - 1 Shrnutí a doplnění probraného učiva (obecnější východiska a modely) 2 Buněčný metabolismus složitost vs. jednoduchost speciální vs. obecnější 3 Které faktory, a jak mohou modulovat dělení, diferenciaci a zánik buněk? ???Dochází k tomu změnami - exprese anebo funkce molekul zapojených v přenosu (transdukci) signálů přímo regulujících proliferaci, diferenciaci a buněčnou smrt včetně exprese protoonkogenů a nádorově-supresorových genů, - signálů, které tyto funkce ovlivňují do určité míry nepřímo, jako jsou inhibice mezibuněčných spojení, ovlivnění funkce enzymů reparujících DNA, metylace DNA, metabolismus apod. (na různých úrovních organizace buněčných systémů) 4 Čtyři nejdůležitější skupiny malých organických molekul v buňkách V buňce (buněčných signalizacích a metabolismu) spolupůsobí látky různé chemické povahy + ionty atd.. 5 Buňky prostoupeny membránovými systémy tvořenými z velké části fosfolipidy Golgiho komplex slouží k transportu, přechovávání a posttranslační modifikaci proteinů, navazování a odstraňování nebílkovinných (zejména cukerných) složek, syntéze polysacharidů a imunoglobulinů, tvorbě váčků využívaných při exocytóze. Drsné endoplazmatické retikulum: syntéza některých bílkovin,oligomerizace proteinů, rozklad poškozených bílkovin. Hladké endoplazmatickém retikulum: odstraňování toxických látek, některé části metabolismu lipidů a metabolismu hemu, regulované uvolňování Ca2+ iontů. Cytoplazmatická membrána: semipermeabilní obal ohraničující vnitřek buněk od vnějšího prostředí a kontrolující pohyb látek do buňky a ven z buňky. Je selektivně permeabilní pro ionty a organické molekuly. Chrání buňku před vnějšími vlivy. Podílí na různých buněčných procesech jako buněčná adheze, výměna iontů, buněčných signalizacích. Skládá se z lipidové dvouvrstvy se zakotvenými proteiny, glykoproteiny, cholesterolem, sfingolipidy. 6 MEMBRANOVÉ SYSTÉMY a buněčné kompartmenty protientropické důsledky STRUKTURNÍ ÚLOHA FOSFOPIDŮ v BUŇKÁCH a BUNĚČNÉ FUNKCE 7 Funkčně nebo prostorově oddělené soubory prvků (složek). Důsledkem je kompartmentalizace – vznik a existence kompartmentů. V důsledku toho jsou prvky (složky), např. látky, buňky atd., nerovnoměrně rozmístěny. Příklady Všechny membránami ohraničené struktury mají své „vnitřní prostředí“. Selektivně jsou v nich zadržovány určité molekuly proti koncentračnímu spádu. Některé reakce tak proběhnout mohou, jiným může být zabráněno. Tato protientropická distribuce molekul a buněčných struktur, směřující proti neuspořádanosti, má velký význam pro buněčný metabolismus a regulace. Základem pro tento stav je existence buněčných membrán, jeden ze základů existence biologických systémů. Kompartmenty 8 PC - fosfatidylcholin diC 16 – k. palmitová diC 18:2 – k. linoleová chol - cholesterol Dynamický charakter biologických membrán - model Znázorněna je dynamika „samoorganizačních schopností“ modelového systému (v µs) vytvářet membránové struktury ve vodném prostředí, jsou-li dodány prekursory: 9 Dynamický charakter biologických membrán (model) a lipidové rafty Zajištění většiny biologických funkcí se neobejde bez unikátních interakcí lipidových komponent jako jsou VNMK, fosfolipidy s dalšími biologicky významnými molekulami. VNMK jsou součástí lipidových raftů: membránových mikrodomén obohacených o glykosfingolipidy + cholesterol Jejich modulace mohou významně měnit intenzitu a také směr signálové transdukce PC - fosfatidylcholin diC 16 – k. palmitová diC 18:2 – k. linoleová chol - cholesterol Červená – nenasycené lipidy Zelená - nasycené lipidy A - planární rozložení C - liposom 10 Prerkursory: Struktura fosfolipidů a jejich orientace v plasmatické membráně 11 Mastné kyseliny - struktura C-16 (k. palmitová) 12 Phospholipases (PL) Estery - Kyselina + alkohol (-OH skupina karboxylové kyseliny nahrazena organickým zbytkem vzniklým z alkoholu po odštěpení vodíku z OH skupiny). Amidy - náhradou skupiny OH karboxylové skupiny za amidovou skupinu NH2. PLA-2 PLA-1 PLC PLD Složení fosfolipidů a jejich štěpení fosfolipázami (PL) 13 14 No phosphate Fyzikálně-chemické vlastnosti fosfo- a glykolipidů dovolují ve vodném prostředí vzniknout strukturám membránového charakteru na samoorganizačním „self-sealking“ principu. Další formy lipidů D.G.Cornwell and N.Morisaki, Free Radicals in Biology. Vol.6, 1984 15 Efekt koncentrace mastných kyselin (VNMK) na proliferaci krvetvorných nádorových buněk D.G.Cornwell and N.Morisaki, Free Radicals in Biology. Vol.6, 1984 16 Efekty koncentrace mastných kyselin na proliferaci krvetvorných nádorových buněk (vliv peroxidace lipidů) 17 D.G.Cornwell and N.Morisaki, Free Radicals in Biology. Vol.6, 1984 Efekty koncentrace mastných kyselin na proliferaci krvetvorných nádorových buněk (vliv prostaglandinů) D.G.Cornwell and N.Morisaki, Free Radicals in Biology. Vol.6, 1984 VLIV KONCENTRACE NENASYCENÝCH MASTNÝCH KYSELIN (VNMK) NA PROLIFERACI NÁDOROVÝCH BUNĚK – shrnutí (do r. 1985) („FATTY ACID PARADOXES“ ) Efekty závisí na koncentraci U modelových krvetvornývh (nádorových) populací mohou VNMK generovat jak + , tak – signál na proliferaci 18 Spektrum eikosanoisů 19 N-6 (CH3) Čtyři cesty přeměny AA na své metabolity eikosanoidy From: J. Lipid Res. 2009 June; 50 (6): 1015-1038. 20 MEMBRÁNOVÉ POSFOLIPIDY CYCLOOXYGENÁZY EPOXYGENÁZY (P450) LIPOXYGENÁZY CH2 CH CO NH CH2 COOH NH COCH2CH2CHCOOH NH2 C5H11 OH S COOH COOH LTA4 LTF4 LTE4 LTD4 LTC4LTB4 EPOXYKYSELINY, DIOLY, etc. TXB2 TXA2 PGI2 PGD2 PGE2 PGH2 PGG2 LTC4: PLA2 O OH COOH OH PGE2: METABOLISMUS KYSELINY ARACHIDONOVÉ 21 Hlavní osy biosyntézy eikosanoidů. Metabolity hlavních směrů přeměny jsou barevně odlišeny: COX (fialově), 5-LOX (oranžově), 15-LOX (zeleně), 12-LOX (žlutě), CYP epoxygenázy (červeně), CYP ω-hydroxylázy (modře), nenzymatická oxidace (šedě) From: J. Lipid Res. 2009 June; 50 (6): 1015-1038. 22 Rozšířené schéma hlavních směrů biosyntézy eikosanoidů. PG nomenclature and structure. Arachidonic acid carbons are numbered 1–20, starting from the carboxylate. The prostaglandin letter indicates composition of the prostane ring, with PGH2 as an example. From: J. Lipid Res. 2009 June; 50 (6): 1015-1038. 23 STRUKTURY METABOLITŮ KYSELINY ARACHIDONOVÉ (AA) From: J. Lipid Res. 2009 June; 50 (6): 1015-1038. Struktury metabolitů AA, jejichž vznik je katalyzován cytochromy P450 24 From: J. Lipid Res. 2009 June; 50 (6): 1015-1038. Struktury metabolitů AA, jejichž vznik je katalyzován 12-lipoxygenázou 25 From: J. Lipid Res. 2009 June; 50 (6): 1015-1038. (cystein) LTC4 (peptidoleukotrieny) Struktura metabolitů AA (peptidoleukotrien C4 a Lipoxin (LXA4) 26 From: J. Lipid Res. 2009 June; 50 (6): 1015-1038. Struktura metabolitů AA (peptidoleukotrien C4 a Eoxinoxin (EXC4) 27 Examples of LTB4 metabolism by β-oxidation, CYP ω-hydrolases, and glucuronidation. From: J. Lipid Res. 2009 June; 50 (6): 1015-1038. Příklad metabolismu LTB4 CYP ω – hydrolasa CYP ω – hydrolasa β - oxidace glucuronidace Glukuronidace - konjugace s kyselinou glukuronovou (glukosiduronovou). Je to děj lokalizovaný v největším počtu tkání a orgánů. Má největší spektrum xenobiotik, se kterými vytváří konjugáty. To zvyšuje polárnost a rozpustnost substrátu ve vodě, což ulehčuje detoxikaci a vylučování. 28 receptory růstové signály molekuly signálové transdukce molekuly zesilovací kaskády regulátory transkripce cykliny CDKs p27 p21 p16 p15 + Transdukce (přenos) signálů „klasické“ schéma s. transdukce 29 Transdukce (přenos) signálů Membránové receptory Růstové signály hygrofilní povahy (proteiny, katecholaminy, apod.) molekuly signálové transdukce molekuly zesilovací kaskády regulátory transkripce cykliny CDKs p27 p21 p16 p15 Lipofilní regulátory Jaderné receptory Způsob signalizace odvislý od chemické podstaty ligandů 30 Představuje zákonitě koordinovanou (a nesmírně rychlou) souslednost dějů (reakcí) vedoucích od vnější plasmatické membrány (návázání regulátoru -ligandu- na plasmatickou membránu anebo průchod regulátoru touto membránou) přes cytosol k jádru (expresi genetické informace). Jedná se o PŘENOS INFORMACE. Výsledkem je zabezpečení všech fyziologických funkcí buněk a organismu včetně regulace cytokinetiky (proliferace, diferenciace a smrti buněk v čase). Procesu se účastní řada regulátorů různé chemické povahy. Charakter přenosu signálu se odvíjí se od specifické chemické struktury jednotlivých komponent dané signální dráhy. Podstatou je změna konformace molekul (souslednost změn konformací). Jeden z principiálních rozdílů způsobu signalizace spočívá zejména v tom, zda má daný regulátor povahu hygrofilní (lipofóbní) anebo hygrofóbní (lipofilní). Transdukce (přenos) signálů - podstata 31 Receptorem zprostředkovaná dráha aktivace (naznačení sousledností konformačních změn) 32 PŘÍKLADY - ENZYMY 33 Podstatou je změna konformace Substrát přesně zapadne do lůžka v molekule enzymu. V tomto lůžku ho poutají různé typy sil: hydrofobní (modrá), přitahování opačně nabitých skupin (zelená v substrátu a červená v lůžku), vodíkové můstky. Štěpená vazba se tím dostane mezi „nůžky“ silně polárních skupin (např. karboxylů). Při „vyvolaném přizpůsobení“ je enzym teprve domodelován silami, které poutají substrát k jeho lůžku. Jak vzniká komplex substrát – enzym Substrát Enzym 34 Alosterická aktivace enzymu. Enzym sám není schopen rozštěpit substrát, neboť jeho molekula nemá správný tvar. Teprve naváže-li se na jiné místo regulační molekula (hnědá zprava), než se váže substrát, získá funkční formu. regulační molekula substrát enzym 35 Regulační molekula se připojuje opět na jiném místě molekuly enzymu, než kam se váže substrát. Tím se liší od pouhého blokování lůžka, které může způsobit látka podobná substrátu (soutěživá čili kompetitivní inhibice). Alosterická inaktivace patří k regulačním pochodům. Může ji vyvolat jen zcela určitá látka, ta, která svými vlastnostmi přesně odpovídá místu, na které se váže. enzym Regulační molekula Alosterická inaktivace enzymu. 36 A. Basu: Pharmacol. Ther., 59 (3), 257-280, 1993 37 Struktura izoforem protein kinázy C (PKC) - schéma A. Basu: Pharmacol. Ther., 59 (3), 257-280, 1993 Model aktivace protein kinázy C 38 Kaskáda proteinových kináz v přenosu signálu Ca 2+ Ca 2+ Ca 2+ ATPase PIP2 DAG Ca 2+ PLC RSRS G PKC sm ACTIVATIVACE CÍLOVÝCH PROCES protein phosphorylation kináza kináza kináza kinázakinázakinázakináza PKC Zesílení signálu 39 Buněčné signalizace obecněji s důrazem na metabolismus fosfolipidů 40 CSF-1 c-fms PKC? e.g.u-PA, JE, KC b actin, fibronectin R (b) hck, frg, fos, jun, myc G1 cyclins DNAsynthesis mRNA nucleus ? Glucose ? K+ Na+ Na+ H+ PKC tyr tyr-P receptor substrates e.g. PI-3 kinase G proteins (ras/GAP?) other effectors e.g. RAF-1 kinase Fluid-phase pinocytosis phospholipids phospholipases DAG ? ? 41 P. Cohen: TIBS, 17 (10), 408–413, 1992 Pět základních signálních systémů, které fungují v eukaryotických buňkách – základní schéma 42 43 Pět mezibuněčných paralelních signálních drah aktivovaných receptory svázanými s G-proteiny, tyrozin kinázovými receptory nebo oběma typy Growth factor Receptor DNA synthesis Transducer Effector 2nd messenger Target Regulatory proteins RNA/protein synthesis Tyrosine kinase abl erb B2/neu fes/fps fgr fyn kit lck met ret sea src trk yes Nuclear fos jun myb myc ski Serine kinase mil/raf mos pim-1 pks raf rel G protein rab ral ras Receptor bek erb B fkg fms mas ros Growth factor fgf-5 hst sis int-2 MEMBRANECYTOSOLNUCLEUS Receptor Receptor Receptor Receptor Receptor tyrosine kinase G protein PLCg G protein G protein PLA2 Adenylyl- cyclase Na+/H- antiport [pH]i ? cAMP PKA Arachidonate PG TX Calmodulin DG IP3 PKC PK (?) [Ca2+]i Oncogenes podle: G.Powis: TiPS; 12: 188 -194, 1991 44 Jednotlivé úrovně signálních kaskád s naznačením zapojení fosfolipidových komponent mRNA RE proteiny inhibice (NSAID) membránové fosfolipidy jaderné receptory transkripční faktory (NFkB, PPAR, AP-1...) signální kaskáda membránová fluidita PUFA vnitrobuněčné funkce membránové fosfolipidy SIGNÁL (např. cytokiny) sekrece inserce n-6 PUFA (AA, LA) n-3 PUFA Mimobuněčné podněty (cytokiny, hormony, polutanty, záření) eikosanoidy LOX COXP450 kyselinakyselina arachidonováarachidonová ROS lipidová peroxidace genová exprese DNA mRNA RE mRNA RE proteiny inhibice (NSAID) membránové fosfolipidy jaderné receptory transkripční faktory (NFkB, PPAR, AP-1...) signální kaskáda membránová fluidita PUFA vnitrobuněčné funkce membránové fosfolipidy SIGNÁL (např. cytokiny) sekrece inserce n-6 PUFA (AA, LA) n-6 PUFA (AA, LA) n-3 PUFAn-3 PUFA Mimobuněčné podněty (cytokiny, hormony, polutanty, záření) eikosanoidy LOX COXP450 kyselinakyselina arachidonováarachidonovákyselinakyselina arachidonováarachidonová ROSROS lipidová peroxidace lipidová peroxidace genová exprese DNA (stresory) Změny metabolismu, buněčného růstu diferenciace a apoptózy lipidové rafty MOLEKULÁRNÍ MECHANISMY působení ω-3 a ω-6 VNMK (mediátory a modulátory buněčné signalizační sítě) 45 PLA 2 PLA 2 P receptor growth factors hormones AA - ion channel activity - guanylate cyclase - adenylate cyclase protein kinase C protein kinase A tyrosine kinase MAP kinase G-proteins cyclooxygenases lipoxygenases CP450 monooxygenases eicosanoid s transcription factors gene expression cell growth + According to: A. Sellmayer et al.: Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids ; 57: 353 - 357, 1997. 46 Zjednodušené schéma úlohy eikosanoidů v buněčných signalizacích Modulace cytokinetiky látkami tukové povahy (Shrnutí) Fosfolipidy a zejména jejich složky vysoce nenasycené kyseliny (PUFA), včetně jejich metabolitů eikosanoidů, patří mezi významné epigeneticky působící faktory schopné ovlivnit jak dělení a zánik normálních, ale i transformovaných buněčných populací, tak proces maligní transformace. Hlavní mechanismy působení PUFAs 1) přímé ovlivnění aktivity transkripčních faktorů regulujících expresi genů významných z hlediska cytokinetiky 2) produkce eikosanoidů působících na přenos signálů růstových regulátorů, cytokinů a imunitní systém 3) produkce reaktivních kyslíkových metabolitů vznikajících peroxidací lipidů. 47 VŠECHNY HLAVNÍ KOMPONENTY SPOLUPŮSOBÍ Otázkou je charakter interakcí 48 Časové hledisko: efekt je závislý na délce působení doba působení 49 V reálném prostředí jednotlivé faktory spolupůsobí v různých koncentracích (Použita vlastní data z: Eur. J. Pharmacol. 316, 349–357, 1996) Příklad interakce dvou faktorů inhibujících proliferaci epiteliálních buněk CCL64 (%) (Esculetin = Faktor 1) a (TGF-β1= faktor 2) Synergické působení a nelineární charakter odpovědi jsou zjevné po kombinaci vyšších koncentrací obou faktorů. 50 Interakce závisí na koncentraci látek a mohou mít různý charakter (antagonistický, aditivní, synergický) Jednotlivé signální dráhy bývají mezi sebou propojeny. Mohou interagovat, „spolupůsobit“. 51 Obecné schéma aktivace rec. TKs (zde na příkladu EGFR) 1. ligand se specificky váže na receptor 2. receptor dimerizuje 3. tyrosin-kinázové domény se navzájem fosforylují 4. autofosforylace vede k navázání (recruitment) adaptérových proteinů (zde Grb2) 5. v závislosti na receptoru se aktivují „downstream“ signální dráhy – zde např. Ras/Raf1/MEK/MAPK kinázová dráha, 6. která vede k regulaci transkripce 52 https://en.wikipedia.org/wiki/Cell_signaling Přehled klíčových signálních drah Key components of a signal transduction pathway (MAPK/ERK pathway shown) Zpětnovazebná inhibice proliferace EGF ? 53 EGF: epidermální růstový faktor, PLA2: fosfolipáza A2, AA: kyselina arachidonová, 5-LOX: 5-lipoxygenáza, 5HETE: 5 hydroxykyselina, LTA4, C4: leukotrien A4, C4, PKC: protein kináza C, DAG: diacylglycerol, PIP2: fosfoinositoldifosfát, PLC: fosfolipáza C, Tyr K: tyrosin kináza Ca 2+ Ca 2+ Ca 2+ Ca 2+ AA 5HETE LTC4LTA4 PIP2DAG Tyr-K Tyr-K PLA2 5-LOX PKC PLC + Nuclear responses EGF EGF Přenos signálu Epidermálního Růstového Faktoru (EGF) modulovaný metabolity kyseliny arachidonové (AA) Podle:Peppelenbosh et al.:Cell, Vol. 69, 2, 1992, 295-303 54 55 Příklad propojení (Wnt dráha a její modulace eikosanoidy) Propojení signálních drah Nadměrná produkce PGE2 podporuje v žaludku a kolonu vznik nádorů Lze ovlivnit 56 NSAIDs mohou účinkovat i na jiné typy nádorových buněk Vlastní výsledky - Příklad praktického využití NSAIDs Působení NSAIDs na nádorové buňky in vivo 0 20 40 60 80 100 120 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 Doba přežití (týdny) % Přežití Kontrola Dicloph 0.15 mg p<0,01 Dicloph 0.5 mg p<0,05 Ibuprof 0.5 mg Ibuprof 0.15 mg p<0,01 Flurbiprof 0.5 mg Flurbiprof 0.15 mg p<0,05 NSAIDs inhibují COX2 a působí protizánětlivě PŘEŽÍVÁNÍ ZVÍŘAT s nádorem (fibrosarkom G:5:113) PO TERAPII INHIBITORY COX 57 K zamyšlení strukturu biologických membrán a co jsou tzv. lipidové rafty? Co je „transdukce signálů“ (molekulární podstata) a jakým způsobem dochází k multiplikaci signálů? Obecné principy. Úlohu lipidů a fosfolipidů obecněji, jejich význam pro regulaci buněčných procesů a pro organismus (včetně úlohy v energetickém a intermediárním metabolismu)? Metabolismus kyseliny arachidonové (AA) a hlavní dráhy přeměny? Co můžete odvodit z její struktury a ze struktury jejich metabolitů? Nakreslit tyto struktury (AA, LTC4, PGE atd.)? Nakreslit schéma libovolného fosfolipidu a vyznačit místa jeho štěpení fosfolipázami s uvedením jejich názvů? Molekulární mechanismy působení konkrétních vysoce nenasycených mastných kyselin (n-3, n-6) a eikosanoidů, jejich fyziologickou úlohu? Spolupůsobení látek různé chemické povahy a propojení jednotlivých signálních drah? Uveď příklady. 58 Dovedeš popsat a vysvětlit Děkuji za pozornost 59