Bi7311: Praktikum z molekulární biologie prokaryot

Úloha: Izolace bakteriální DNA pro pulzní gelovou elektroforézu a provedení pulzní gelové elektroforézy


Cíl úlohy

Porovnat makrorestrikční spektrum vybraných kmenů S. aureus, ověřit makrorestrikční spektrum transduktant (viz úloha Transdukce).

Bakterie druhu Staphylococcus aureus patří mezi běžné humánní patogeny a jsou původcem širokého spektra akutních a chronických onemocnění. Většina rozdílů mezi kmeny S. aureus je způsobena přítomností mobilních genetických elementů, jako jsou plazmidy, bakteriofágy, ostrovy patogenity, transpozony a inzerční sekvence.

Kmeny použité v první části této úlohy (A.) patří mezi běžné laboratorní kmeny, lišící se obsahem profágů ve svých genomech. Na základě výsledků PFGE můžeme navzájem odlišit jednotlivé kmeny a identifikovat, kde v genomu došlo k začlenění profágů. Na základě změny počtu fragmentů či změny jejich velikosti v makrorestrikčním spektru je možné určit typ genetické změny v genomu studovaného kmene.

V druhé části úlohy (B.) ověříme na základě makrorestrikčních spekter úspěšnost transdukčního experimentu. Získané transduktanty mají makrorestrikční spektrum shodné s recipientním kmenem S. aureus RN4220. Jako kontroly použijeme donorový kmen S. aureus Jevons B a recipientní kmen S. aureus RN4220.

Seznam materiálu


  • 37°C inkubátor, vortex.
  • Skleněné 10 ml zkumavky se šroubovacím uzávěrem, mikrozkumavy.
  • Vodní lázeň předehřátá na 55°C.
  • SeaKem Gold agaróza (Lonza),  Pulsed Field Certified Agarose (Bio‐Rad).
    TE pufr (10 mM Tris. Cl, 1 mM EDTA, pH 8,0), 0,5M EDTA, promývací roztok (10 mM TrisCl, 10 mM EDTA, 10mM EGTA, 1M NaCl, pH 7,5), lyzostafin (0,5 mg/ml), lyzační roztok (6 mM Tris. Cl, 100 mM EDTA, 1 M NaCl, 0,5% Brij 58, 0,2% Na‐deoxycholát, 0,5% laurylsarkosin, pH 7,6), deproteinizační roztok (25 mM EDTA, 20 mM EGTA, 1% laurylsarkosin, pH 9,0), lysozym (50mg/ml), proteináza K (10 mg/ml).
  • Vhodné restrikční enzymy (pro S. aureus používáme SmaI), sterilní deionizovaná voda.

Seznam bakteriálních kmenů
Bakteriální kultury inkubované v 2×YT médiu při 37°C/18h. 


  • S. aureus ISP8 [77+], ISP8 [53+], ISP8 [47+] a S. aureus PS47 [53+], PS47 [77+], PS47.
  • S. aureus Jevons B, S. aureus RN4220.

Postup:

1. den

  1. Zaočkovat kulturu do 20 ml 2× YT média a inkubovat 18 h při 37 °C

2. den

  1. Odebrat 10 ml kultury, přidat 100 μl 0,5 M EDTA a chladit kulturu 10 min. při 4 °C.
  2. Centrifugovat 10 min. při 4°C a 4000 ot. / min.
  3. Dvakrát promýt v 5 ml promývacího roztoku zchlazeného na ledu.
  4. Naředit bakteriální kulturu promývacím roztokem na hodnotu optické hustoty OD600 = 0,2 – 0,3.
  5. Centrifugovat 10 min. při 4°C a 4000 ot. / min., slít supernatant a odsát zbytky roztoku, tak, aby nedošlo k porušení peletu
  6. Sediment resuspendovat ve 100 μl promývacího roztoku a přenést do mikrozkumavek.
  7. Mikrozkumavky s bakteriální suspenzí postupně zahřívat 2‐3 min. na 55 °C.
  8. K buněčné suspenzi přidat 10 μl lyzostafinu (zásobní koncentrace 0,5 mg/ml), přidat 110 μl 2% agarózy s nízkým bodem tání (roztok v 50 mM Tris-Cl, 5 mM EDTA, pH 8,0) předem vytemperované na 55 °C a pečlivě promíchat pipetou.
  9. Suspenzi přepipetovat po 200 μl do komůrek tvořítka a uložit na 20‐30 min. do lednice.
  10. Vzniklé agarózové bločky přenést do lyzační směsi, která obsahuje 1 ml lyzačního roztoku a 20 μl lyzostafinu (zásobní koncentrace 0,5 mg/ml), a inkubovat je za mírného třepání ve vodní lázni o teplotě 37°C pro dobu 2 až 3 hodin
    Poznámka

    Lyzační roztok připravujeme do skleněných zkumavek se šroubovacím uzávěrem. Jednotlivé roztoky dále jen vyměňujeme a s bločky nemanipulujeme. Pokud nedojde v tomto kroku k projasnění bločků, ponecháme lyzovat přes noc při 4 °C.

  11. Lyzační směs vyměnit za směs deproteinizační, která obsahuje 1 ml deproteinizačního roztoku a 25 μl proteinázy K (zásobní koncentrace 20 mg/ml), a inkubovat bločky za mírného třepání ve vodní lázni o teplotě 55 °C po dobu 12 hodin (roztok vyměnit po šesti hodinách).
    Poznámka

    Předem vyhřát lázeň na 55°C.

3. den:

  1. Bločky promýt alespoň 5× v 10 ml 1× TE pufru při 4 °C, TE pufr vyměňovat po 1,5 hodinách, průběžně chladit na 8 °C.
  2. Bločky lze po důkladném promytí štěpit restrikční endonukleázou (nejčastěji štěpíme přes noc).
    Poznámka

    Nenaštěpené bločky je možné skladovat po dobu 1 roku v lednici (TE pufr vyměňovat jednou za měsíc).

Restrikční štěpení (postup)

  • Pro restrikční štěpení uřízneme z bločku vzorek o velikosti cca 1×1×5 mm.
  • S bločky manipulujeme sterilně pomocí nerezových špachtlí, které sterilizujeme v etanolu a následným ožíhnutím nad plamenem.
  • Bločky řežeme pomocí ostrého skalpelu, nejlépe na sterilní Petriho misce, kterou si můžeme podložit tmavou podložkou pro lepší manipulaci.
  • Vlastní štěpení:
    Do mikrozkumavky namíchat restrikční směs (na 1 vzorek: 10 μl 10× restrikčního pufru, 85 μl vody a 5‐10 U restrikčního enzymu). Inkubujeme při požadované teplotě několik hodin nebo přes noc.

4.‐5. den:

  1. Vlastní provedení PFGE.
Příprava gelu a nastavení elektroforézy (poznámky)
  • Připravit 1,2% agarózový gel v 1×TAE pufru. Vychladit 2000 ml 1×TAE pufru v elektroforetické vaně.
  • Připravit 0,8% low‐melting agarózu v 1×TAE pufru vytemperovanou na 45°C pro zalití bločků do gelu.
  • Jednotlivé bločky vkládáme pomocí nerezové špachtle do jamek připraveného gelu (mezi jednotlivými vzorky špachtli sterilizujeme).
  • Jamky s bločky zakápnout připravenou 0,8% low‐melting agarózou.
  • Podmínky elektroforézy pro rozdělení SmaI fragmentů chromozomální DNA S. aureus:
    • Pulzní časy 1 – 70s, lineární vzestup
    • Teplota 14°C.
    • Napětí 6 V/cm.
    • Čas cca 24 h. pro gel délky 14 cm.


Literatura

Interpreting chromosomal DNA restriction patterns produced by pulsed-field gel electrophoresis: criteria for bacterial strain typing. Tenover et al. (1995). J. Clin. Microbiol. 33 (9): 2233 – 2239.