Samičí gametofyt a gameta ROSTLINNÁ EMBRYOLOGIE, PODZIMNÍ SEMESTR 2021 MGR. HANA CEMPÍRKOVÁ, PH.D. Samičí gametofyt a gameta u Jak to vypadá uvnitř pestíku? u Co je samičí gameta a jak vzniká? u Jak to vypadá uvnitř zralého vajíčka? Více než 10 ilustrací Pestík a Květ zdarma - Pixabay Pestík – samičí pohlavní ústrojí Gyneceum Pestík, vajíčko a oplození Květ, jeho stavba, květenství, význam 1/41 - PDF Stažení zdarma Pestík krytosemenných rostlin – gyneceum •tvořen souborem plodolistů •zaujímá vnitřní pozici ve spirálovém nebo kruhovém uspořádání květu •začátek vývoje plodolistů: specifická primordia ve střední části květního meristému Vývoj pestíku Arabidopsis thaliana gynoecium development. Cartoons displaying wild-type gynoecia (A), in longitudinal sections (B), and transversal sections (C) from stage 8 to 11. The different stages and processes of gynoecium and ovule development are indicated at the bottom of the figure. Abbreviations: b, boundary; CMM, carpel margin meristem; f, funiculus; ii, inner integument; n, nucellus; o, ovule; oi, outer integument; op, ovule primordium; p, placenta; s, septum; v, valve. The region of the CMM where placenta is formed is indicated with orange lines. Typy semeníků a placentace Flowering Plant Reproduction D:\Dokumenty\Obrázky\Embrya\Embrya\Gynecea2.jpg IV I, II – apokarpní gyneceum, placentace povrchová boková nástěnná a povrchově středová III – synkarpní g., placentace komisurální úhlová - axilární IV – parakarpní g., nástěnná placentace V – lysikarpní g., středová placentace u Řez semeníkem lilie, 3 plodolisty, axilární placentace Anatropní vajíčko > F:\vyuka_obr\anatomie\ovule.gif Terminologie podle prof. Strassburger (Univerzita v Jeně), 1877 popis zárodečného vaku, jak ho známe i dnes. Popis: buňky v zárodečném vaku jsou v jedné linii od mikropyle po chalázu. 8 jader: vaječná buňka, 2 synergidy, 3 antipody a 2 jádra centrální buňky zárodečného vaku. Základní typy vajíček u přímé obrácené příčné u Vývoj vajíčka Samičí archespor – megasporocyt – meióza – tetráda haploidní megaspor – „funkční“ megaspora (ostatní zanikají) – 3 mitózy – 8 haploidních jader v mladém zárodečném vaku – diferenciace buněk – zralý zárodečný vak = samičí gametofyt Přehled typů zárodečných vaků Erdelská 1981(podle Maheshwari 1951) monosporické bisporické tetrasporické Polygonum Oenothera Allium Podostemon Adoxa Fritillaria Plumbagella Drusa Penea Peperomia Plumbago Plants 08 00074 g006 Bioassays 28:1067–1071, 2006 Zárodečný vak typu Polygonum fungující megaspora mladý zárodečný vak zralý zárodečný vak SA – zdroj auxinu monosporický monopolární z.v. monosporický bipolární z.v. tetrasporický tetrapolární z.v. Sundaresan et Alandete-Saez 2010 Modulární hypotéza vývoje zárodečného vaku kombinovaná s modelem gradientu auxinu Fig. 4. The modular hypothesis for embryo sac evolution can be combined with the auxin gradient patterning model. (A)After asymmetric meiosis in a basal angiosperm (Nuphar polysepalum), a functional megaspore undergoes two sequential mitotic divisions that generate the modular four-nucleate (red box) female gametophyte. The auxin source (SA) at the micropylar end determines which nuclei will become the synergid cells (SC), the egg cell (EC) or the central cell (CC). Both the EC and the CC are haploid (n). (B)In the Polygonum-type embryo sac (Arabidopsis, maize), the functional megaspore undergoes three sequential mitotic divisions that generate the seven-celled/ eight-nucleate female gametophyte. The first mitotic division is hypothesized to result in a duplication of the four- nucleate module observed in basal angiosperms (red and gray boxes). The proximity to the sporophytic auxin source induces a functional module (red box) at the micropylar end with cell fates similar to the basal angiosperm module (i.e. SCs, EC and CC), whereas the other module (gray box) contributes a nucleus to the CC, which becomes diploid (2n), and the other three nuclei will specify antipodal cells (ACs). (C)In the Penaea-type embryo sac (Euphorbia procera), after meiosis, all four spores undergo two sequential mitotic divisions, which terminate with four modules (N1-N4; yellow, blue, red and green boxes) within one embryo sac (nuclei depicted in the same color are identical). The auxin source at the micropylar end determines which module will form the egg cell (n) and the synergid cells. All modules contribute one nucleus to the tetraploid CC. Ch, chalaza; Mi, micropyle. Vývoj vajíčka a zárodečného vaku u Arabidopsis Grossnilaus a Schneitz 1998 Hejátko et al. 2003 vývojová stádia https://www.biochem.wisc.edu/faculty/bednarek/lab/ovsections.aspx Vývoj vajíčka Arabidopsis Schneitz et al. TIPS 1998 a, d = primordia vajíček před diferenciací megasporocytu b, e = stadium tetrády a základů integumentů c – vajíčko s pylovou láčkou na funikulu Vývoj vajíčka a zárodečného vaku u Arabidopsis a gradient auxinu Sundaresan et Alandete-Saez 2010 Fig. 3. Cell specification within the Arabidopsis female gametophyte by auxin. (A)Schematic of the different stages of female gametophyte development from the one-nucleate FG1 stage (left) to the eight-nucleate FG5 stage (right), showing the position of nuclei relative to the auxin gradient (red) during embryo sac development. The auxin source (IAA) is located in the sporophytic tissue at FG1 and FG2. The micropylar end of the female gametophyte becomes the auxin source from FG3 until FG5. (B)Model for cell-fate specification upon cellularization by an auxin gradient (red line) in the syncytial embryo sac. Synergid cells (SC) are formed from nuclei exposed to the highest auxin, the egg cell (EC) from a nucleus in position of high auxin, the central cell (CC) from a nucleus in intermediate to low auxin and antipodal cells (AC) are derived from nuclei exposed to no or very low auxin. (C)Sketch of the female gametophyte after cellularization (FG6 stage) showing the two synergid cells (purple), the egg cell (blue), the central cell (green) and the antipodal cells (pink). CV, central vacuole; PN, polar nuclei. (D)FG1 stage. Diagram showing the initial specification of the micropylar auxin source through PIN-FORMED 1 (PIN1)-dependent auxin efflux in the sporophytic nucellus. PIN1 (green) molecules transport auxin (red arrows) towards the nucellus, leading to the formation of an auxin maximum (red circle) that is transported inside the female gametophyte at FG2. FM, functional megaspore; Fu, funiculus; IIn, inner integuments; Nu, nucellus; OIn, outer integuments. Regulace vývoje vajíčka Arabidopsis C:\Dokumenty\Obrázky\web_17.6\model.gif Info: Baker et al. 1997, Skinner et al. 2004, novější: Cucinotta et al. 2014 3 důležité části vývoje vajíčka: diferenciace mateřské buňky a následná megasporo- a megagametogeneze, tvorba integumentů a tvorba poutka (funikulu). Vývoj integumentů je regulován různými geny, jak bylo zjištěno pomocí deficientních mutantů (např. ANT – aintegumenta – žádné integumenty, BEL1 – zastavení vývoje integumentů v počátečních fázích („zvoneček“)…) Variabilita utváření antipod 1 4 2 3 5 6 1 Delphinium 2 Sedum 3 Butomopsis 4 Gentiana 5 Ligularia 6 Spargania 7 Trautweteria 8 Chrysocoma 9 Anthemis 10 Bidens 7 8 9 10 Shrnutí C:\Dokumenty\Obrázky\lilium_makro_IASPR\ovules.jpg C:\Dokumenty\Obrázky\lilium_makro_IASPR\lil-f5a.jpg C:\Dokumenty\Obrázky\lilium_makro_IASPR\lil-f6a.jpg C:\Dokumenty\Obrázky\lilium_makro_IASPR\lil-f10a.jpg https://www.iasprr.org/old/iasprr-pix/lily/ Pojmy: stavba pestíku, srůst plodolistů, megasporogeneze, megagametogeneze, mladý zárodečný vak, zralý zárodečný vak, popis zárodečného vaku a vajíčka (integumenty, mikropyle, chaláza, poutko, nucellus)